雙向電泳完整的操作步驟
（一）第一向等電聚焦1.從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT,不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管）,置室溫溶解.2.在小管中加入0.01g DTT,Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml,充分混勻.3.從小管中取出400ml水化上樣緩沖液,加入100ml樣品,充分混勻.4.從冰箱中取-20℃冷凍保存的IPG預制膠條（17cm pH 4-7）,室溫中放置10分鐘.5.沿著聚焦盤或水化盤中槽的邊緣至左而右線性加入樣品.在槽兩端各1cm左右不要加樣,中間的樣品液一定要連貫.注意：不要產生氣泡.否則影響到膠條中蛋白質的分布.6.當所有的蛋白質樣品都已經加入到聚焦盤或水化盤中后,用鑷子輕輕的去除預制IPG膠條上的保護層.7.分清膠條的正負極,輕輕地將IPG膠條膠面朝下置于聚焦盤或水化盤中樣品溶液上,使得膠條的正極（標有+）對應于聚焦盤的正極.確保膠條與電極緊密接觸.不要使樣品溶液弄到膠條背面的塑料支撐膜......閱讀全文
雙向電泳
實驗概要本實驗介紹了雙向電泳技術，先進行等電聚焦電泳（按照pI分離），然后再進行SDS-PAGE（按照分子大小），經染色得到二維分布的蛋白質圖。實驗原理雙向凝膠電泳的原理是第一向基于蛋白質的等電點不同用等電聚焦分離，第二向則按分子量的不同用SDS-PAGE分離，把復雜蛋白混合物中的蛋白質在二維平面上
雙向電泳
蛋白質組研究的發展以雙向電泳技術作為核心. 雙向電泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分離約1 000個E.coli蛋白，并表明蛋白質譜不是穩定的，而是隨環境而變化. 雙向電泳原理簡明，第一向進行等電聚焦，蛋白質沿pH梯度分離，至各自的等電點；隨后，再沿垂直的方向進行分子量
雙向電泳操作步驟——雙向電泳操作步驟
實驗方法原理雙向電泳（two-dimensional electrophoresis）是等電聚焦電泳和SDS-PAGE的組合，即先進行等電聚焦電泳（按照pI分離），然后再進行SDS-PAGE（按照分子大小），經染色得到的電泳圖是個二維分布的蛋白質圖。實驗材料細胞樣品試劑、試劑盒ddH2O溴酚藍指示劑
雙向電泳實驗
試劑、試劑盒 尿素去污劑儀器、耗材 聚丙烯酰胺凝膠實驗步驟 一、第一向1. 等電聚焦凝膠的準備雙向電泳通常用聚丙烯酰胺凝膠作介質，但需含有 8 mol/L 尿素、0.5%~2% 非離子或兩性離子去污劑。為了增加樣品的可溶性，可加 0.5% CHAPS。在第一向電泳中，最重要的是用載體兩性電解
雙向電泳實驗
ISO-DALT 方法 IPG-DALT 方法 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 雙向電泳（two-dimensional electrophoresis）是等電聚焦電
雙向電泳操作步驟
水化上樣( 被動上樣)1. 從冰箱中取出 IPG 膠條，室溫放置 10min。2. 沿水化盤槽的邊緣從左向右線性加入樣品，槽兩端各 1cm 左右不加樣，中間的樣品液一定要連貫。注意：不要產生氣泡，否則會影響膠條中蛋白質的分布。3. 用鑷子輕輕撕去 IPG 膠條上的保護層。注意：堿性端較脆弱，應小心操
雙向電泳操作步驟
實驗材料 細胞樣品試劑、試劑盒 ddH2O溴酚藍指示劑礦物油丙烯酰胺乙醇MilliQ 水飽和正丁醇SDS瓊脂糖儀器、耗材 樣品水化盤冰箱厚濾紙搖床電泳槽電泳儀鑷子二向電泳制冷儀手套實驗步驟 1. ?樣品制備。2. ?第一向等電聚焦。3. ?第二向SDS電泳。4. ?凝膠的染色。5. ?凝膠掃描和分析
雙向電泳操作步驟
雙向電泳操作步驟 第一向凝膠 第二向凝膠 組織來源的蛋白質樣品的溶解和制備 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 雙向電泳（two-dimensiona
雙向電泳的原理
蛋白質首先在薄條凝膠中通過等電聚焦分離。然后將凝膠水平放置在第二個平板狀凝膠上，通過SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質。水平分離反映了pI的差異；垂直分離反映了分子量的差異。因此，原始的蛋白質組成在兩個維度上擴散。使用雙向電泳技術可以分解數千種細胞蛋白質。可以從凝膠中切取出單個蛋白質點，并通過質譜
雙向電泳操作步驟
一、等電聚焦 1. 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室溫溶解。 2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混勻。 3. 從小管中取出400ml水化上樣緩沖
雙向電泳的定義
雙向電泳（two-dimensional electrophoresis,2-DE）是等電聚焦電泳和SDS-PAGE的組合，即先進行等電聚焦電泳（按照pH分離），然后再進行SDS-PAGE（按照分子大小），經染色得到的電泳圖是個二維分布的蛋白質圖。蛋白質組研究的發展以雙向電泳技術作為核心。雙向電泳由
雙向電泳:清洗IEF管
1．IEF之后，用去離子水充分地清洗管子。2．加熱500ml 0.6％?Deconex溶液至60～80℃。3．將玻璃管子浸入Deconex溶液，70℃下放置3次10分鐘：每10分鐘之后，分別用鑷子移走玻璃管，倒出清洗液，加入新的清洗液，再于70℃下清洗10分鐘。4．用去離子水浸洗管子。5．加熱500
雙向電泳的實驗過程
實驗概要本實驗介紹了雙向電泳的詳細實驗過程。實驗原理2-DE的第一向電泳等電聚焦是基于等電點不同而將蛋白粗步分離，第二向SDS-PAGE是基于蛋白質分子量不同，而將一向分離后的蛋白進一步分離。這樣就可以得到蛋白質等電點和分子量的信息。主要試劑1. BSA2. Bradford液3. DTT4. 0.
雙向電泳完整操作步驟
（一）第一向等電聚焦1. 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室溫溶解。2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混勻。3. 從小管中取出400ml水化上樣緩沖液，加入100ml樣
雙向電泳的實驗過程
實驗原理2-DE的第一向電泳等電聚焦是基于等電點不同而將蛋白粗步分離，第二向SDS-PAGE是基于蛋白質分子量不同，而將一向分離后的蛋白進一步分離。這樣就可以得到蛋白質等電點和分子量的信息。主要試劑1. BSA2. Bradford液3. DTT?4. 0.05% 的溴酚蘭?5. IPG buffe
雙向電泳完整操作步驟
（一）第一向等電聚焦1. 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室溫溶解。2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混勻。3. 從小管中取出400ml水化上樣緩沖液，加入100ml樣
雙向電泳的實驗過程
一、? ? ? ? 實驗原理：2-DE的第一向電泳等電聚焦是基于等電點不同而將蛋白粗步分離，第二向SDS-PAGE是基于蛋白質分子量不同，而將一向分離后的蛋白進一步分離。這樣就可以得到蛋白質等電點和分子量的信息。二、? ? ? ? 實驗步驟：1. 樣品的溶解取純化后的晶體蛋白3.0mg，加入300u
雙向電泳的操作步驟
第一向等電聚焦⒈ 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT，不含IPG buffer）一小管（1ml/管），置室溫溶解。⒉ 在小管中加入0.01g DTT， 0.5% 對應膠條pH范圍的IPG buffer，充分混勻。⒊ 從小管中取出400微升水化上樣緩沖液，加入100微升樣品（
雙向電泳的操作步驟
第一向等電聚焦⒈ 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT，不含IPG buffer）一小管（1ml/管），置室溫溶解。⒉ 在小管中加入0.01g DTT， 0.5% 對應膠條pH范圍的IPG buffer，充分混勻。⒊ 從小管中取出400微升水化上樣緩沖液，加入100微升樣品（
雙向電泳完整的操作步驟
（一）第一向等電聚焦1.從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT,不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管）,置室溫溶解.2.在小管中加入0.01g DTT,Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml,充分混勻.3.從小管中取出400ml水化上樣緩沖液,加入100ml樣品,充分
雙向電泳完整的操作步驟
（一）第一向等電聚焦?1. 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室溫溶解。?2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混勻。?3. 從小管中取出400ml水化上樣緩沖液，加入100
雙向電泳的原理和特點
雙向電泳（two-dimensional electrophoresis,2-DE）是等電聚焦電泳和SDS-PAGE的組合，即先進行等電聚焦電泳（按照pH分離），然后再進行SDS-PAGE（按照分子大小），經染色得到的電泳圖是個二維分布的蛋白質圖。蛋白質組研究的發展以雙向電泳技術作為核心。雙向電泳由
雙向電泳的送樣要求
1、 樣品新鮮。說明：組織樣本及細胞采樣后應立即放入液氮中速凍或加入樣品穩定劑，運輸過程中血液、血清樣品4℃保存，其它樣品-20℃保存，不超過48小時（若外地郵寄，除血液、血清及細胞外請用干冰）。2、 樣品蛋白的總量不少于1mg。說明：組織樣本每份約250-500mg；細胞樣品每份106—107細胞
雙向電泳原理及操作步驟
實驗概要本文介紹了雙向電泳原理及操作步驟（第一向等電聚焦和第二向SDS-PAGE電泳）。實驗原理二維聚丙烯酰胺凝膠電泳技術結合了等電聚焦技術（根據蛋白質等電點進行分離）以及SDS－聚丙烯酰胺凝膠電泳技術（根據蛋白質的大小進行分離）。這兩項技術結合形成的二維電泳是分離分析蛋白質最有效的一種電泳手段。通
蛋白質技術——雙向電泳
實驗概要蛋白質組研究的發展以雙向電泳技術作為核心. ?雙向電泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分離約1000個E.coli蛋白，并表明蛋白質譜不是穩定的，而是隨環境而變化. ?雙向電泳原理簡明，第一向進行等電聚焦，蛋白質沿pH梯度分離，至各自的等電點；隨后，再沿垂直的方向進行分子
IEF/SDSPAGE雙向電泳法
1975年O′Farrall等人根據不同組份之間的等電點差異和分子量差異建立了IEF/SD S-PAGE雙向電泳。其中IEF電泳（管柱狀）為第一向，SDS-PAGE為第二向（平板）。在進行第一向IEF電泳時，電泳體系中應加入高濃度尿素、適量非離子型去污劑NP-40。蛋白質樣品中除含有這兩種物質外
蛋白質的雙向電泳實驗
實驗方法原理 蛋白質的雙向電泳的第一向為等電聚焦( Isoelect rofocusing ,IEF) , 根據蛋白質的等電點不同進行分離; 第二向為SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳( SDS-PAGE ) , 按亞基分子量大小進行分離。經過電荷和分子量兩次分離后, 可以得到蛋白質分子的等電點
雙向電泳的實驗相關試劑配制
1．? ? ? ? Bradford 工作液95%乙醇? ?? ?? ?? ? 25ml? ?? ? 先用乙醇溶解考馬斯亮蘭G250，溶解完后再加磷85%磷酸? ?? ?? ?? ? 52ml? ?? ? 酸，最后超純水定容至500ml。過濾后置于棕色瓶考馬斯亮蘭G250? ?? ?0.035g?
雙向電泳儀的研究方向
隨著技術的飛速發展，已能分離出10 000個斑點（spot）。 當雙向電泳斑點的全面分析成為現實的時候，蛋白質組的分析變得可行。樣品制備（sample prepareation）和溶解同樣事關2-DE的成效，目標是盡可能擴大其溶解度和解聚，以提高分辨率。用化學法和機械裂解法破碎以盡可能溶解和解聚蛋白
雙向電泳實驗——IPGDALT－方法
試劑、試劑盒尿素去污劑還原劑載體兩性電解質儀器、耗材IPG 凝膠實驗步驟一、第一向1. 固相 pH 梯度凝膠或凝膠條的準備固相 pH 梯度凝膠的灌注及聚合方法請參閱 固相 pH 梯度等電聚焦 有關章節，如需要可切成 3~5 mm 寬的膠條在 -20℃ 保存一年。為避免繁瑣和復雜的灌膠和切膠條程序和保