逆轉錄PCR的實驗步驟
一、實驗器具與材料：1、移液槍：1ml、200μl、20μl、10μl、2μl2、吸頭：1ml、200μl、20μl3、勻漿管：5ml4、吸頭臺：放置1ml吸頭的一個，放置20μl吸頭的一個5、EP管：1.5ml、0.2ml、100μl6、試劑瓶：2個60ml的棕色試劑瓶（廣口，帶蓋）；1個125ml的白色試劑瓶（放無水乙醇）7、量筒：50ml、250ml、500ml8、容量瓶：250ml、500ml、1000ml9、試管架：5ml、1.5ml、20μl10、鹽水瓶：250ml、500ml各2個備用，一個裝無水乙醇，另一個裝DEPC水11、鋁制飯盒：4個12、塑料小飯盒：1個13、大瓷缸：2個14、錫泊紙：一卷15、卷紙：2卷16、三角燒瓶：帶蓋，稍大二、實驗器具的處理與準備1、塑料制品：（包括槍頭、EP管、勻漿管等）先將DEPC水從容量瓶中倒入瓷缸中，將塑料制品逐個浸泡其中，其中小槍頭需要吸管打入DEPC水，過夜，然后高壓，再......閱讀全文
PCR實驗的原理和方法步驟
原理就是堿基互補原則步驟模板DNA的變性：模板DNA經加熱至94℃左右一定時 聚合酶鏈式反應間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備；②模板DNA與引物的退火(復性)：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至40~60℃左右，引物與模板
PCR實驗的原理和方法步驟
原理就是堿基互補原則步驟模板DNA的變性：模板DNA經加熱至94℃左右一定時 聚合酶鏈式反應間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備；②模板DNA與引物的退火(復性)：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至40~60℃左右，引物與模板
PCR實驗的原理和方法步驟
原理就是堿基互補原則步驟模板DNA的變性：模板DNA經加熱至94℃左右一定時 聚合酶鏈式反應間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備；②模板DNA與引物的退火(復性)：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至40~60℃左右，引物與模板
熒光定量PCR具體實驗步驟
熒光定量PCR具體實驗步驟，1 樣品RNA的抽提①取凍存已裂解的細胞，室溫放置5分鐘使其完全溶解。②兩相分離 每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的氯仿，蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后，15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色
熒光定量PCR實驗基本步驟
1、目的基因（DNA和mRNA）的查找和比對；2、引物、探針的設計；3、引物探針的合成；? ??4、反應體系的配制；? ??5、反應條件的設定；? ??6、反應體系和條件的優化；? ??7、熒光曲線和數據分析；? ??8、標準品的制備；
關于逆轉錄PCR的技術介紹
由一條RNA單鏈轉錄為互補DNA（cDNA）稱作“逆轉錄”，由依賴RNA的DNA聚合酶（逆轉錄酶）來完成。隨后，DNA的另一條鏈通過脫氧核苷酸引物和依賴DNA的DNA聚合酶完成，隨每個循環倍增，即通常的PCR。原先的RNA模板被RNA酶H降解，留下互補DNA。 RT-PCR的指數擴增是一種很靈
關于逆轉錄PCR引物的選擇
對靶序列中潛在的引物位點進行分析， 這些位點應該不會形成同源多聚體結構，也沒有明顯的形成二級結構的趨勢，不會自身互補，與基因組中的其他序列無顯著的同源性。 （1）依據寡核苷酸引物與其靶序列形成雜合分子的熔解度的計算中提供的公式計算各引物的熔解溫度。 （2）選擇一對匹配完好的正向和反向引物。兩
逆轉錄酶的合成步驟
1、使用前每個組份輕輕混勻，然后2000rpm離心20s2、取滅過菌且無核酸酶的0.2ml離心管，依次加入2～5μgRNAnμL3、65℃保溫5min，然后冰浴5min；4、往3步驟中的0.2ml離心管依次加入下列組份RNase抑制劑（40u/μL）0.5μL10×M-MLVReactionBuff
PCR實驗的準備工作及步驟
步驟構成：①模板DNA的變性：模板DNA經加熱至94℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應做準備;②模板DNA與引物的退火(復性)：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結合;③引
逆轉錄PCR(RTPCR)擴增基因特異片段
逆轉錄PCR(RT-PCR)擴增基因特異片段 一、實驗原理RT-PCR是將RNA的反轉錄（RT）和cDNA的聚合酶鏈式擴增（PCR）相結合的技術。首先經反轉錄酶的作用從RNA合成?cDNA，再以cDNA為模板，擴增合成目的片段。RT-PCR技術靈敏而且用途廣泛，可用于檢測細胞中基因表達水平，細胞中R
PCR技術原理、實驗步驟和應用
?一、實驗目的1.掌握聚合酶鏈式反應的原理。2. 掌握移液槍和PCR儀的基本操作技術。二、實驗原理PCR技術，即聚合酶鏈反應（polymerase chain reaction，PCR）是由美國PE Cetus公司的Kary Mullis在1983年（1993年獲諾貝爾化學獎）建立的。這項技術可在試
實時熒光定量PCR具體實驗步驟
?1 樣品RNA的抽提①取凍存已裂解的細胞，室溫放置5分鐘使其完全溶解。②兩相分離 每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的仿，蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后，15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚仿相，中間層以及無色水相上
實時熒光定量PCR具體實驗步驟
1 樣品RNA的抽提①取凍存已裂解的細胞，室溫放置5分鐘使其完全溶解。②兩相分離 每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的氯仿，蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后，15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚氯仿相，中間層以及無色水相
PCR技術原理、實驗步驟和應用
一、實驗目的1.掌握聚合酶鏈式反應的原理。2. 掌握移液槍和PCR儀的基本操作技術。二、實驗原理PCR技術，即聚合酶鏈反應（polymerase chain reaction，PCR）是由美國PE Cetus公司的Kary Mullis在1983年（1993年獲諾貝爾化學獎）建立的。這項技術可在試管
PCR技術原理、實驗步驟和應用
一、實驗目的1.掌握聚合酶鏈式反應的原理。2. 掌握移液槍和PCR儀的基本操作技術。二、實驗原理PCR技術，即聚合酶鏈反應（polymerase chain reaction，PCR）是由美國PE Cetus公司的Kary Mullis在1983年（1993年獲諾貝爾化學獎）建立的。這項技術可在
PCR技術原理、實驗步驟和應用
一、實驗目的1.掌握聚合酶鏈式反應的原理。2. 掌握移液槍和PCR儀的基本操作技術。二、實驗原理PCR技術，即聚合酶鏈反應（polymerase chain reaction，PCR）是由美國PE Cetus公司的Kary Mullis在1983年（1993年獲諾貝爾化學獎）建立的。這項技術
PCRDHPLC實驗原理和步驟
【實驗目的】1．了解PCR-DHPLC技術的原理。2．了解并熟悉PCR-DHPLC技術的步驟。【實驗原理】DHPLC技術也稱為WAVE核苷酸片段分析系統。利用高效液相色譜原理，PCR擴增后的DNA片段與緩沖液（TEAA）混合形成液相，流動相被高壓驅動，通過一個DNA分離柱——DNA Sep柱
RTPCR實驗原理與步驟
【實驗原理】RT-PCR 是以RNA 為模板經逆轉錄反應（Reverse Transcription，RT）產生cDNA 第一鏈，再以cDNA 為模板進行PCR 擴增以檢測目的基因的表達情況。【實驗儀器】1. 恒溫金屬浴2. PCR 擴增儀【試劑及配制】RNA PCR Kit (AMV) Ver 3
關于逆轉錄PCR的驟變性介紹
破壞DNA中可能存在的較難破壞的二級結構。使DNA充分變性，減少DNA復雜結構對擴增的影響，以利于引物更好的和模板結合，特別是對于基因組來源的DNA模板，最好不要吝嗇這個步驟。此外，在一些使用熱啟動Taq酶的反應中，還可激活Taq酶，從而使PCR反應得以順利進行。
簡述逆轉錄PCR的注意事項
（1）雙鏈DNA的變性溫度是由雙鏈中C+G的含量決定的，C+G含量越高，模板DNA的溶解溫度就越高。在選擇的變性溫度下，模板鏈越長變性所需時間就越長。如果變性溫度過低或變性時間過短，會使僅僅富含A+T區域變性。當模板DNA的G+C含量超過55%的時需要更高的變性溫度。 （2）復性過程采用的溫度
簡述逆轉錄PCR的延伸時間原因
用PCR儀擴增時，變性-退火-延伸循環完成后，繼續72度延伸了10分鐘的原因： 1、延伸時間取決于待擴增DNA片段的長度，當然是在反應體系一定的條件下。例如，使用TaqDNA聚合酶，72度時的堿基摻入率為35-100bp/s，因此延伸速率為1kb/min。 2、根據延伸速率推得，擴增1kb以
逆轉錄PCR概念及方法介紹
逆轉錄 PCRRT-PCR(reverse transcriptase PCR,RT-PCR)是一種 RNA 逆轉錄和 PCR 結合起來建立的 RNA 的聚合酶鏈反應。RT-PCR 使 RNA?檢測的敏感性提高了幾個數量級[較 Northern 印跡雜交敏感(3～6)×103倍],也使一些極微量 R
逆轉錄RTPCR實驗操作程序及注意事項
實驗操作過程中必須帶口罩、手套，實驗室盡量避免人員干擾。RT-PCR的試劑都應在冰上融化，等完全融化后再取；用過的試劑應瞬間離心后放回-20℃保存；試劑應按順序加，加完后再混勻離心。加入試劑前在管壁上做好標記，避免加錯試劑；加過一種試劑后將EP管蓋子的方向改變，避免重復和漏加；不同試劑和樣品要更換吸
基因的PCR擴增實驗原理、實驗材料和操作步驟
實驗原理單鏈DNA在互補寡聚核苷酸片段的引導下，可以利用DNA聚合酶按5’→3’方向復制出互補DNA。這時單鏈DNA稱為模板DNA，寡聚核苷酸片段稱為引物（Primer），合成的互補DNA稱為產物DNA。雙鏈DNA分子經高溫變性后成為兩條單鏈DNA，它們都可作為單鏈模板DNA，在相應的引物引導下，用
PCR步驟
1、?DNA變性（90℃-96℃）：雙鏈DNA模板在熱作用下， 氫鍵斷裂，形成單鏈DNA。2、退火（25℃-65℃）：系統溫度降低，引物與DNA模板結合，形成局部雙鏈。3、延伸（70℃-75℃）：在Taq酶（在72℃左右，活性最佳）的作用下，以dNTP為原料，從引物的5′端→3′端延伸，合成與模板互
pcr實驗詳細步驟是怎么樣的
1、模板的取材主要依據PCR的壙增對象，可以是病原體標本如病毒、也可以是病理生理標本如細胞等。2、標本處理的基本要求是除去雜質，并部分純化標本中的核酸。多數樣品霓要經過SDS和蛋白 酶K處理。難以破碎的細菌，可用溶菌酶加EDTA處理。3、引物最好在模板cDNA的保守區內設計，引物長度一般在15~30
pcr實驗詳細步驟是怎么樣的
1、模板的取材主要依據PCR的壙增對象，可以是病原體標本如病毒、也可以是病理生理標本如細胞等。2、標本處理的基本要求是除去雜質，并部分純化標本中的核酸。多數樣品霓要經過SDS和蛋白 酶K處理。難以破碎的細菌，可用溶菌酶加EDTA處理。3、引物最好在模板cDNA的保守區內設計，引物長度一般在15~30
逆轉錄PCR，擴增出的條帶怎樣區分
區分你的模板里面是否有基因組污染的方法：在做逆轉錄反應的同時，做一個陰性對照，其他所有都和實驗組相同，除了不加入逆轉錄酶。得到RT-PCR產物后跑膠，如果該陰性對照里也擴增出來明顯條帶的話，你的模板就是有基因組污染，否則就是正常。
實時熒光定量PCR具體實驗步驟（二）
5 制備用于繪制梯度稀釋標準曲線的DNA模板①針對每一需要測量的基因，選擇一確定表達該基因的cDNA模板進行PCR反應。反應體系：序號? 反應物? 劑量1? 10× PCR緩沖液? 2.5 ul2? MgCl2 溶液? 1.5 ul3? 上游引物F? 0.5 ul4? 下游引物R? 0.5 ul5?
PCRSSCP實驗原理和操作步驟
【實驗目的】1．了解PCR-SSCP技術的原理。2．了解并熟悉PCR-SSCP技術的步驟。 【實驗原理】 PCR-SSCP是1989年日本Orita等創建的篩查突變的新技術。它是一種簡單、快速、經濟的點突變篩查手段。PCR-SSCP技術的基本原理是PCR擴增后的DNA片段經變性成單鏈DNA，