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    神經組織塊膜片鉗全細胞記錄實驗

    實驗方法原理 通過全細胞膜片技術來檢測神經元興奮性及其放電活動,是電生理實驗的基本方法。神經組織塊膜片鉗技術相對于培養細胞膜片鉗技術而言,細胞更接近原始的生理環境,細胞具有更好的生理狀態,封接后可維持更長的時間。實驗材料 細胞試劑、試劑盒 人工腦脊液(ACSF)消化酶濃縮液ACSF通混合氣尼龍網準備電極內液儀器、耗材 放大器(如Multiclamp700B)數模轉換器(如Digidata1322series)顯微鏡(如OlympusBXSI)微操縱器實驗步驟 1.大鼠以0.5ml/100g1%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉,背部去毛備皮,頸椎脫臼法處死。2.迅速剪開其背部皮膚,自L5、L3處橫斷脊椎,剪開肌肉,迅速取下L5-3脊椎,并置于冰水混合狀態的氧飽和ACSF中,以上過程要求迅速,在1min之內完成,以保證神經元活性。3.仔細去除脊椎周圍肌肉組織。4將脊椎沿矢狀面縱向剖開,將其一分為二,用游絲攝剝離脊髓,如果采用單側疼痛模型,如C......閱讀全文

    神經組織塊膜片鉗全細胞記錄實驗

    實驗方法原理通過全細胞膜片技術來檢測神經元興奮性及其放電活動,是電生理實驗的基本方法。神經組織塊膜片鉗技術相對于培養細胞膜片鉗技術而言,細胞更接近原始的生理環境,細胞具有更好的生理狀態,封接后可維持更長的時間。實驗材料細胞試劑、試劑盒人工腦脊液(ACSF)消化酶濃縮液ACSF通混合氣尼龍網準備電極內

    神經組織塊膜片鉗全細胞記錄實驗

    實驗方法原理 通過全細胞膜片技術來檢測神經元興奮性及其放電活動,是電生理實驗的基本方法。神經組織塊膜片鉗技術相對于培養細胞膜片鉗技術而言,細胞更接近原始的生理環境,細胞具有更好的生理狀態,封接后可維持更長的時間。實驗材料 細胞試劑、試劑盒 人工腦脊液(ACSF)消化酶濃縮液ACSF通混合氣尼龍網準備

    神經組織塊膜片鉗全細胞記錄實驗

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    組織薄片膜片鉗全細胞記錄實驗

    實驗方法原理通過全細胞膜片鉗技術來檢測組織薄片(脊髓片或腦片)上神經元的突觸后電位、突觸后電流及該突觸后電位或電流的可塑性改變等現象。組織薄片膜片鉗技術與分散細胞膜片鉗技術相比,具有的優點是組織薄片中的細胞更接近在體的原始環境,很好地保持了神經元之間的突觸聯系。實驗材料神經細胞試劑、試劑盒孵育細胞外

    組織薄片膜片鉗全細胞記錄實驗

    實驗方法原理 通過全細胞膜片鉗技術來檢測組織薄片(脊髓片或腦片)上神經元的突觸后電位、突觸后電流及該突觸后電位或電流的可塑性改變等現象。組織薄片膜片鉗技術與分散細胞膜片鉗技術相比,具有的優點是組織薄片中的細胞更接近在體的原始環境,很好地保持了神經元之間的突觸聯系。實驗材料 神經細胞試劑、試劑盒 孵育

    組織薄片膜片鉗全細胞記錄實驗

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    培養細胞膜片鉗記錄實驗

    實驗方法原理培養細胞膜片鉗記錄是在無菌條件下將組織塊經過機械分離和消化酶的處理后分離成單個細胞并在孵箱中培養數天后進行常規膜片鉗記錄的一種方法。細胞原代培養過程與急性分離細胞的過程基本一致,但前者需在無菌條件下進行實驗材料細胞試劑、試劑盒細胞培養液一般用F-12medium細胞分離過程用液一般用Pu

    培養細胞膜片鉗記錄實驗

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    培養細胞膜片鉗記錄實驗

    實驗方法原理 培養細胞膜片鉗記錄是在無菌條件下將組織塊經過機械分離和消化酶的處理后分離成單個細胞并在孵箱中培養數天后進行常規膜片鉗記錄的一種方法。細胞原代培養過程與急性分離細胞的過程基本一致,但前者需在無菌條件下進行實驗材料 細胞試劑、試劑盒 細胞培養液一般用F-12medium細胞分離過程用液一般

    什么是全細胞膜片鉗實驗

      膜片鉗技術被稱為研究離子通道的“金標準”。是研究離子通道的最重要的技術。目前膜片鉗技術已從常規膜片鉗技術(Conventional patch clamp technique)發展到全自動膜片鉗技術(Automated patch clamp technique)。  傳統膜片鉗技術每次只能記錄

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