還原糖包括葡萄糖、果糖、麥芽糖,在葡萄糖分子中含有淤青的醛莖,在果糖分子中含有淤青的酮莖,在乳糖中和
麥芽糖中含有淤青的半縮羧莖,因此都有還原性。在測定還原糖時一般測定總糖時所有將糖類水解為轉化糖再測定
的方法都可用來測定還原糖。
(一)斐林氏容量法
1.此法的原理、試劑、方法與總糖的測定方法相同。只是樣品溶液不必以過轉化,而是直接取濾液進行滴定,濾液進行滴定,濾液中的還原糖含量以在0.2-0.5%為好,又能通過增減樣品量或改變稀釋倍數來調節。10毫升費林氏A、B液混合時理論上相當還原糖量如下:
葡萄糖(無水)果糖或轉化糖尿病 0.0500克
乳糖尿病 0.0678克
麥芽糖 0.0807克
2試劑
(1) 斐林氏A液,稱69.8g cp硫酸銅于100ml水中,過濾備用
(2) 斐林氏B液,稱34.6g.cp濃流鋅鈉和100gcp NaOH于1000ml水中,過濾備用
3方法
稱取樣品10-20g:制備與轉化同鐵氰化鉀法。將樣液倒入滴管中,吸取A,B液準備預滴定
預滴定:
吸A、B液各5ml→從滴管中加15ml樣液→加熱至沸→繼續滴加樣液→至蘭色變潛→加3滴次甲基蘭→在1分鐘內滴定到終點
達到終點時,稍微過量的轉化糖,將蘭色的次甲基蘭染色體還原為無色的隱色體,而顯出氧化亞銅的紅色,去堿性條件下加熱糖的產物是復雜的。
去堿性中斷裂是由于堿度不同,加熱時間不同,生產不等的碎片,這種碎片給后面滴定帶來誤差,而且,這種碎片與糖沒有化合量的關系,所以,Lanecrol-Eynon Method 作出數據檢索表
正式滴定:
吸A,B液各5ml→于三角瓶→加比預定量少0.5-1.0ml樣液→2分鐘內要求沸騰1分鐘→加3滴指示劑→用樣液滴定蘭色消失
總沸騰時間為3分鐘,即滴定在3分鐘完成。
計算:
還原糖=( F·V2)/(W·V1)×100
F:轉還糖回數,即與10ml斐林氏試液相當的轉化糖毫克數,
V1:樣品試液總體積
V2:樣品試液滴定量
W:樣品重量
在測量乳糖制品時,若蔗糖與乳糖的含量比超過3:1時,則應與滴定量中加上相關表中(課本中表9-8)校正值后在進行計算
我們舉例如下:
如果標準果糖溶液度為每100ml溶液含糖262.5mg。對于10ml斐林試液從9-5可以查得果糖液滴定應為20ml。如果不是20ml,可先算出A,B液 校正等數。然后進行計算
再如標準糖溶液濃度為每100ml溶液含糖199.3ml,對于10ml A,B液 從9-4中查到,糖液滴定量應為 25.00ml,若有出入可校正。如果要求不高,可省略校正步驟但要求1%得 測定誤差,則省略校正。另外有時候并未根據檢索表計算樣含糖量,但對A,B液進行標定,以使確定相當得 還原糖量。這種誤差為0.5%。下面我們講標定量A,B液
準確準確稱取烘干冷卻得 A.R蔗糖1.5g→用水溶解稱取250ml容量瓶中→定容→吸50ml于100ml 定量瓶中→加HCL5ml→再65-70攝氏度水裕15分鐘→冷卻→用30%NaOH中和→定容
準確吸A,B液 各5ml于三角瓶中→加水約50ml玻璃珠三粒→加熱至沸→保持1分鐘→加指示劑1滴→再煮1分鐘→立即用糖液滴定至蘭色褪去,紅色出現即為終點
正式滴定,先加入比預滴定時少0.5ml左右得糖液煮沸1分鐘→加指示劑1滴→再煮沸1分鐘→繼續滴至終點
計算: A=W*V/500×0.95
A:相當于10ml斐林氏A、B液的轉化糖的量
W:稱取蔗糖的質量
V :滴定蔗糖的量
500:稀釋比
0.95:換算等數
最后計算:
總糖(還原糖)以轉化糖計%=(A*1000/W*V)*100
A:同上
W:制取樣品的量
V:滴定是時樣品消耗量
1000:是稀釋倍數(100/50*500)
1.預測定的目的:對樣品溶液中還原糖濃度有一定要要求(0.1%左右),測定時樣品溶液的消耗體積應該與標定葡萄糖標液的消耗體積相近,通過測定了解樣品濃度是否合適,濃度過大或過小應該加以調整,使測定時消耗樣品溶液量在10毫升左右;二是通過測定可知道此溶液的大概消耗量,以便在正式的滴定時,預先加入比實際用量少1毫升左右的樣液,只留下1ml左右的樣液在續滴定時加入,以便保證在1分鐘內完成續滴定工作,提交預測定的準確度。
2.此實驗影響測定結果的主要操作因素是反應液堿度、熱源強度,煮沸時間和滴定速度一般煮沸時間短消耗糖多,反之,消耗糖液少,滴定速度過快,消耗糖量多,反之,消耗糖量少。另外溶液堿度愈高,二價銅的還原愈快,因此必須嚴格控制反應的體積,使反應體系堿度一致。熱源一般采用800W電爐,反應液在2秒內沸騰。
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