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  • 核酸親和層析法純化蛋白質實驗2

    核酸親和層析實驗材料樣品蛋白質試劑、試劑盒平衡緩沖液(Tris-HClKClEDTA)非特異 DNA實驗步驟在上樣品液到核酸親和柱之前,建議首先采用其他的純化方法,如硫酸銨沉淀、離子交換或凝膠過濾層析等富集目的蛋白。這樣可以除去絕大多數的污染物,并減少非特異結合。親和層析柱一般來講是短而粗的,例如長寬比為 2:1。1. 10 倍柱體積的平衡緩沖液(20 mmol/L,pH 8.0 Tris-HCl,0.15 mol/L KCl,1 mol/L EDTA)平衡柱;2. 調整樣品液到相似的離子濃度(即 0.15 mol/L KCl);3. 加非特異 DNA 到樣品液內,每 ug 純蛋白質加 100 ng。混勻后在冰上孵育 10 min。非特異 DNA 長度通常是 1 kb 左右,可以是 poly(dI-dC)或 poly(dA-dT),也可以是超聲破碎的大腸桿菌、牛胸腺或鮭魚精 DNA。為了除去孵育后可能形成的復合物,需 10 00......閱讀全文

    核酸親和層析法純化蛋白質實驗2

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    核酸親和層析法純化蛋白質實驗

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    核酸親和層析法純化蛋白質實驗

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    若表達蛋白質上含有一段六個His 的片段,而親和吸附膠上接有鎳離子,此蛋白質會特異性地結合到吸著膠體;洗去雜質后可imidazole 洗脫目標蛋白質。(Pharmacia 操作手冊, Affinity Chromatography)。儀器設備:親和層析管柱 (Bio-Rad 731-1550 Pol

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    凝集素親和層析法純化蛋白質實驗

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    固相化金屬親和層析法純化蛋白質實驗

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    固相化金屬親和層析法純化蛋白質實驗

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    親和層析法(aflinity-chromatography)純化蛋白質

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    親和層析法(affinity-chromatography)純化胰蛋白酶2

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    實驗材料制備性的DNA親和層析樹脂試劑、試劑盒緩沖液Z或其他柱緩沖液(如緩沖液Ze或TM)配制時含不同的KCl濃度(從緩沖液 Z 0.1 mol L KCl 至緩沖液 Z 1 mol L KCl對緩沖液Z 0. 1 mol L KCl透析的部分純化的蛋白質組分非特異性的競爭DNA柱再生緩沖液柱儲存緩

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    醋酸鈉乙醇沉淀法核酸純化實驗

    實驗方法原理 核酸是多聚陰離子的水溶性化合物,可以與許多1價、2價離子結合形成鹽類,后者在有機溶劑中不溶解也不變性.在較低溫度下形成沉淀.實驗材料 待純化樣本試劑、試劑盒 醋酸鈉緩沖液無水乙醇70%乙醇實驗步驟 實驗試劑:1. 3mol/L醋酸鈉緩沖液,pH5.2:稱取醋酸鈉(NaAC·3H20)4

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    疏水作用層析法純化蛋白質實驗

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    親和層析法(affinity-chromatography)純化多克隆抗體

    【實驗原理】如圖所示,親和層析的高度選擇性使得從某一初始材料中純化,富集某一含量較低的目的蛋白成為可能,因此親和層析是蛋白質分離純化過程中最有效的方法之一。另外,如果配基與蛋白質的親和能力很強,也可同時進行樣品的濃縮。 雖然多數情況下不需要將抗體與其他血清蛋白分開,但如果一旦需要,蛋白A親和層析

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