WIKI資訊
三、器材與試劑： 1．器材： ①夾心式垂直板電泳槽，凝膠模（135×100×1.5mm）（北京六一儀器廠） ②直流穩壓電源（電壓300—600V，電流50—100mA） ③吸量管（1,5,10 ml） ④燒杯（25,50,100 ml） ⑤ 細長頭的滴管 ⑥1ml注射器及6號長針頭 ⑦微量注射器（10μl或 50μl） ⑧水泵或油泵 ⑨真空干燥器 ⑩培養皿（直徑120mm） 2．試劑： （1）標準蛋白質 目前國內外均有廠商生產低分子量及高分子量標準蛋白質成套試劑盒，用于 SDS-PAGE測定未知蛋白質分子量。 ①高分子量標準蛋白試劑盒（Pharmacia公司產品，表中16-1）。表16-1 5種標準蛋白質蛋白質名稱Mr來源甲狀腺球蛋白 鐵蛋白 過氧化氫酶 乳酸 脫氫酶 血清清蛋白669 000 440 000 232 000 140 000 67 000豬甲狀腺 馬肺 牛肝 牛心 牛 血 清同時按說明書要求處理 ②低分子量標準蛋......閱讀全文
實驗目的了解SDS-PAGE垂直板型電泳法的基本原理及操作技術。學習并掌握SDS－PAGE法測定蛋白質相對分子量的技術。實驗原理 SDS-PAGE電泳法，即十二烷基硫酸鈉—聚丙烯酰胺凝膠電泳法，。1．在蛋白質混合樣品中各蛋白質組分的遷移率主要取決于分子大小和形狀以
SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳技術首先在1967年由Shapiro建立，1969年由weber和Osborn進一步完善。主要用于（1）蛋白質的分離（2）蛋白質的純化。實驗方法原理蛋白質在十二烷基硫酸鈉（SDS）和巰基乙醇的作用下，分子中的二硫鍵還原，氫鍵等打開，形成按1.4 g SDS/1 g蛋白質比例的
電泳法，是指帶電荷的供試品（蛋白質、核苷酸等）在惰性支持介質（如紙、醋酸纖維素、瓊脂糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠等）中，于電場的作用下，向其對應的電極方向按各自的速度進行泳動，使組分分離成狹窄的區帶，用適宜的檢測方法記錄其電泳區帶圖譜或計算其百分含量的方法。 電泳技術的
關鍵詞：western blot 聚丙烯酰胺 分離膠 積層膠 電泳目的：蛋白質的檢測與分析【原理】一個基因表達終極結果是產生相應的蛋白質（或酶）。因此檢測蛋白質是測定基因表達的主要標志，檢測蛋白質的方法很多，除ELISA法外，也可用與檢測DNA和RNA相類似的吸印方法。前兩法有“南”和“北”之意，故
一、實驗目的與原理蛋白質在聚丙烯酰胺凝膠中電泳時，它的遷移取決于它所帶電荷以及分子大小和形狀等因素。1967年Shapiro等人發現，如果在聚丙烯酰胺系統中加入陰離子去污劑十二烷基磺酸鈉（SDS），大多數蛋白質能與SDS按一定比例結合，即每克蛋白質結合1.4g的SDS－復合物都帶上相同密度的負電荷，
目的：1．學習SDS—PAGE測定蛋白質分子量的基本原理。2．掌握垂直板型電泳的基本操作技術。二、原理：蛋白質在聚丙烯酰胺凝膠中電泳時，它的遷移率取決于它所帶凈電荷以及分子的大小和形狀等因素。1967年，Shapiro等人發現，如果在聚丙烯酰胺凝膠系統中加入陰離子去污劑十二烷基磺酸鈉（sodium
SDS-PSGE 實驗方法原理 蛋白質在十二烷基硫酸鈉（SDS）和巰基乙醇的作用下，分子中的二硫
（一）醋酸纖維素薄膜電泳 醋酸纖維素是提纖維素的羥基乙酰化形成的纖維素醋酸酯。由該物質制成的薄膜稱為醋酸纖維素薄 膜。這種薄膜對蛋白質樣品吸附性小，幾乎能完全消除紙電泳中出現的“拖尾”現象，又因為膜的親水性比較小，它所容納的緩沖液也少，電泳時電流的大部分由樣 品傳導，所以分離速度快，電泳時間短，樣品
【概述】帶電顆粒在電場作用下，向著與其電性相反的電極移動，稱為電泳(electrophoresis, EP)。利用帶電粒子在電場中移動速度不同而達到分離的技術稱為電泳技術。 1807年，由俄國莫斯科大學的斐迪南·弗雷德里克·羅伊斯（Ferdinand Frederic Reuss）最早發現。
一、原理 一個基因表達的最終產物是產生相應的蛋白，因此檢測蛋白是測定基因表達的主要標志。 原理：Western Blotting 是將獲得的蛋白質樣品通過SDS-聚丙稀酰胺凝膠電泳，對不同分子量的蛋白質進行分離；并通過轉移電泳將凝膠上分離到的蛋白質轉印至固相支持
ISO-DALT 方法 IPG-DALT 方法 實驗方法原理 雙向電泳（two-dime
實驗方法原理雙向電泳（two-dimensional electrophoresis）是等電聚焦電泳和SDS-PAGE的組合，即先進行等電聚焦電泳（按照pI分離），然后再進行SDS-PAGE（按照分子大小），經染色得到的電泳圖是個二維分布的蛋白質圖。實驗材料蛋白質樣品試劑、試劑盒尿素去污劑儀器、耗材
目的要求學會SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳法原理。掌握用SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳法測定蛋白質分子量的操作技術。實驗原理:SDS是十二烷基硫酸鈉（sodium dodecyl sulfate）的簡稱，它是一種陰離子表面活性劑，加入到電泳系統中能使蛋白質的氫鍵、疏水鍵打開，并結合到蛋白質分子上（在一定
一、蛋白質組學概論隨著人類基因組計劃的實施，生命科學步入了后基因組時代，出現了不同于以往經典生物實驗科學的全新的研究方式─“生物大科學”。這種生物大科學的核心思想是整體性研究，即以生物體內某類物質為對象進行完整的研究。過去對生命活動的研究僅限于研究細胞內個別的基因或蛋白質，而基因組學和蛋白質組學的目
第一章質粒DNA 的分離、純化和鑒定 第二章DNA 酶切及凝膠電泳 第三章大腸桿菌感受態細胞的制備和轉化 第四章RNA 的提取和cDNA 合成 第五章重組質粒的連接、轉化及篩選 第六章基因組DNA 的提取 第七章RFLP 和RAPD 技術 第八章聚合酶鏈式反應(PCR)擴增和擴增產物克隆 第九章分
分子生物學試驗方法探討二－瓊脂糖凝膠電泳技術分子生物學試驗方法探討二－瓊脂糖凝膠電泳技術、瓊脂糖凝膠的特點天然瓊脂（agar）是一種多聚糖，主要由瓊脂糖（agarose，約占80%）及瓊脂膠（agaropectin）組成。瓊脂糖是由半乳糖及其衍生物構成的中性物質，不帶電荷，而瓊脂膠是一種含硫酸根和羧
分子雜交技術 互補的核苷酸序列通過Walson-Crick 堿基配對形成穩定的雜合雙鏈分子DNA 分子的過程稱為雜交。雜交過程是高度特異性的,可以根據所使用的探針已知序列進行特異性的靶序列檢測。雜交的雙方是所使用探針和要檢測的核酸。該檢測對象可以是克隆化的基因組DNA,也可以是細胞總DN
一、原理用聚丙烯酰胺凝膠電泳法分離鑒定蛋白質（protein），主要依賴于電荷效應和分子篩效應。再與標準樣品對照即可確定各區帶的成分。要利用凝膠電泳測定某樣品的蛋白質分子量就必須去掉其電荷效應，使樣品的蛋白質分子的遷移率完全取決于分子量。如在電泳體系中加入一定濃度的十二烷基硫酸鈉（Sodiumdod
一、瓊脂糖凝膠的特點天然瓊脂（agar）是一種多聚糖，主要由瓊脂糖（agarose，約占80%）及瓊脂膠（agaropectin）組成。瓊脂糖是由半乳糖及其衍生物構成的中性物質，不帶電荷，而瓊脂膠是一種含硫酸根和羧基的強酸性多糖，由于這些基團帶有電荷，在電場作用下能產生較強的電滲現象，加之硫酸根可與
電泳法電泳法是指帶電荷的供試品（蛋白質、核苷酸等）在惰性支持介質（如紙、醋酸纖維素、瓊脂糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠等）中，于電場的作用下，向其對應的電極方向按各自的速度進行泳動，使組分分離成狹窄的區帶，用適宜的檢測方法記錄其電泳區帶圖譜或計算其含量(%)的方法。各電泳法，除另有規定外，照下述方法操作。第
一、原理用聚丙烯酰胺凝膠電泳法分離鑒定蛋白質（protein），主要依賴于電荷效應和分子篩效應。再與標準樣品對照即可確定各區帶的成分。要利用凝膠電泳測定某樣品的蛋白質分子量就必須去掉其電荷效應，使樣品的蛋白質分子的遷移率完全取決于分子量。如在電泳體系中加入一定濃度的十二烷基硫酸鈉（Sodiumdod
【電泳法】是指帶電荷的供試品（蛋白質、核苷酸等）在惰性支持介質（如紙、醋酸纖維素、瓊脂糖凝膠、聚丙烯酰胺凝膠等）中，于電場的作用下，向其對應的電極方向按各自的速度進行泳動，使組分分離成狹窄的區帶，用適宜的檢測方法記錄其電泳區帶圖譜或計算其含量（%）的方法。 【分類】&n
蛋白質凝膠電泳通常用于（1）分析分子生物學、遺傳學和生物化學（2）制備技術（3)采用某些方法（如質譜(MS)、聚合酶鏈式反應(PCR)、克隆技術、DNA測序或者免疫印跡）檢測之前部分提純分子。實驗方法原理將蛋白質樣品同離子型去垢劑十二烷基硫酸鈉（SDS)以及硫基乙醇一起加熱，使蛋白質變性，多肽鏈內部
實驗方法原理 將蛋白質樣品同離子型去垢劑十二烷基硫酸鈉（SDS)以及硫基乙醇一起加熱，使蛋白質變性，多肽鏈內部的和肽鏈之間的二硫鍵被還原，肽鏈被打開。打開的肽鏈考疏水作用與SDS結合
蛋白質印跡法（免疫印跡試驗）即Western Blot。它是分子生物學、生物化學和免疫遺傳學中常用的一種實驗方法。其基本原理是通過特異性抗體對凝膠電泳處理過的細胞或生物組織樣品進行著色。通過分析著色的位置和著色深度獲得特定蛋白質在所分析的細胞或組織中表達情況的信息。 蛋白質印跡法是由瑞士米歇爾
SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳法測定蛋白質的分子量（垂直板型電泳）-3⑤1%TEMED：取TEMED1ml，加重蒸水至100ml，置棕色瓶內4℃貯存。⑥10%過硫酸銨（AP）：稱AP1g，加重蒸水至 100ml，此液應每周新配，置棕色瓶內，4℃貯存。⑦電極緩沖液（0.1%SDS，0.1mol·L-1 p
一、核酸的純化在分子克隆 的所有操作中，最基本的操作是核酸的純化。其關鍵步驟是去蛋白質，通常只要用酚/氯仿。氯仿抽提核酸的溶液即可。每當需要把克隆 有某一些所用的酶滅活或去除以便進行下一步時，可進行這種抽提。然而，如要從細胞裂解液等復雜的分子混合物中純化核酸，則要先用某些蛋白水解酶消化大部分蛋白
分子克隆常用技術簡介（核酸純化、濃縮、電泳和DNA、RNA的定量）一、核酸的純化在分子克隆的所有操作中，最基本的操作是核酸的純化。其關鍵步驟是去蛋白質，通常只要用酚/氯仿。氯仿抽提核酸的溶液即可。每當需要把克隆有某一些所用的酶滅活或去除以便進行下一步時，可進行這種抽提。然而，如要從細胞裂解液等復雜的
二維凝膠電泳(2-DE)是廣為蛋白質組學科學家們應用的經典技術之一，蛋白混合物在兩個維度上被分離。第一步是常規的等電聚焦，此過程中蛋白質根據其等電點被分離。接著，第二維使用SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)，將蛋白質按分子量進一步分離。上述兩步操作在互相垂直的兩個方向上，使分離的蛋白
Western免疫印跡（Western Blot）是將蛋白質轉移到膜上，然后利用抗體進行檢測。對已知表達蛋白，可用相應抗體作為一抗進行檢測，對新基因的表達產物，可通過融合部分的抗體檢測。一、原理與Southern或Northern雜交方法類似，但Western Blot采用的是聚丙烯酰胺凝膠電泳，被