動物實驗的接種途徑和方法
動物實驗的接種途徑和方法是檢驗技師考試的內容，醫學教育網搜集整理相關內容供大家參考。 動物實驗的接種途徑和方法包括： ①皮內接種：通常以背部皮膚為宜。 ②皮下接種：選用腹壁、背部或腹股溝等處。 ③肌肉接種：一般選用臀部和大腿部肌肉，若為禽類以胸部肌肉為宜。 ④靜脈接種：家兔以耳靜脈外緣為宜，小鼠和大鼠科注射尾靜脈，豚鼠科注射后腿靜脈，雞可注射翅下靜脈。 ⑤腹腔接種：常用于小白鼠。 ⑥腦內接種：常用于小白鼠。家兔、豚鼠由于顱骨較硬，需用鋼錐先打孔后注射。 ⑦腳掌（墊）接種。......閱讀全文
動物實驗的接種途徑和方法
動物實驗的接種途徑和方法是檢驗技師考試的內容，醫學教育網搜集整理相關內容供大家參考。 動物實驗的接種途徑和方法包括： ①皮內接種：通常以背部皮膚為宜。 ②皮下接種：選用腹壁、背部或腹股溝等處。 ③肌肉接種：一般選用臀部和大腿部肌肉，若為禽類以胸部肌肉為宜。 ④靜脈接種：家兔以耳靜脈外緣為
實驗動物接種途徑和接種方法試驗
實驗方法原理 實驗材料 實驗動物試劑、試劑盒 病毒試劑儀器、耗材 注射器實驗步驟 皮下接種。注射時輕輕捏起皮膚，手持注射器將針頭刺入，固定后即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在后大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外側注射。皮下接種多用于觀察
實驗動物接種途徑和接種方法試驗——靜脈接種
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟靜脈接種。可造成病毒全身性感染，可觀察病毒的致病性或機體對病毒的清除機制。(1) 小鼠、大鼠的靜脈注射：常采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈共有 3 根，左右兩側和背側各 1根．兩側尾靜脈比較容易固定，常被采用。(2) 豚鼠的靜脈注射：一般采用前肢皮
實驗動物接種途徑和接種方法試驗——顱內接種法
實驗方法原理實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟顱內接種法。將臨床標本或特定的病毒直接接種于動物腦內，使動物形成實驗性中樞神經系統感染。(1) 小白鼠：接種時用拇指與食指固定鼠頭，消毒注射部位，于眼后角、耳前線和顱中線構成的三角區域中間進行注射，進針 2-3 mm。注射量乳鼠
實驗動物接種途徑和接種方法——皮下接種法及腹腔接種法
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒病毒試劑儀器、耗材注射器實驗步驟皮下接種。注射時輕輕捏起皮膚，手持注射器將針頭刺入，固定后即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在后大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外側注射。皮下接種多用于觀察動物病毒感染后的免疫學
實驗動物給藥途徑和方法
?在動物實驗中，為了觀察藥物對機能功能、代謝及形態引起的變化，常需將藥物注入動物體內。給藥的途徑和方法是多種多樣的，可根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。 （一）皮下注射 注射時以左手拇指和食指提起皮膚，將連有5（1/2）號針頭的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、貓多在大腿外側，豚
實驗動物給藥途徑和方法
（六）淋巴囊注射蛙類常采用此法，因其皮下有數個淋巴囊，注入藥物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭背淋巴囊常作為蛙類給藥途徑。一般多選用腹部淋巴囊給藥。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然后注入藥液。有時也可采用胸淋巴囊給藥。方法是將針頭刺入口腔，使穿過下頜肌層入
病毒的培養方法實驗——動物接種法
實驗方法原理注意選擇動物種類，年齡。按病毒侵襲部位的不同，選擇適宜的接種途徑，例如腦炎病毒以注射腦內最敏感。接種后經一定潛伏期，動物發病或死亡即進行解剖。根據動物的癥狀表現，器官病理改變，受染臟器組織懸液能在同種動物進行連續傳代，并排除其他微生物污染的可能性等，即可證明有病毒的增殖。實驗材料小白鼠實
實驗動物染毒途徑和技術3
經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：①硫
實驗動物染毒途徑和技術2
? 實驗動物 呼吸量 最低呼吸量 靜式染毒2h可放動物數
實驗動物染毒途徑和技術1
在毒理學試驗中染毒途徑的選擇，應盡可能模擬人在接觸該受試物的方式。最常用的染毒途徑為經口、經呼吸道；經皮及注射途徑。染毒的途徑和方法根據實驗目的、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。不同途徑的吸收速率，一般是靜脈注射>吸入>肌內注射>腹腔注射>皮下注射>經口>皮內注射>其他途徑(如經皮等)
實驗動物染毒途徑和技術4
（三)經皮膚染毒> 經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗，如經皮Lao測定常用大鼠，皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗，皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠，皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除：試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為：
免疫接種的接種途徑
常用的有皮上劃痕、皮內、皮下、口服與氣霧等途徑。死疫苗多用皮下注射法，活疫苗則可用皮內注射、皮上劃痕或以自然感染途徑接種，尤以后者為佳。如脊髓灰質炎活疫苗以口服為佳，而流感疫苗則以氣霧吸入為佳。
免疫接種的接種途徑有哪些？
常用的有皮上劃痕、皮內、皮下、口服與氣霧等途徑。死疫苗多用皮下注射法，活疫苗則可用皮內注射、皮上劃痕或以自然感染途徑接種，尤以后者為佳。如脊髓灰質炎活疫苗以口服為佳，而流感疫苗則以氣霧吸入為佳。
核酸疫苗的接種途徑
直接肌肉注射注射的DNA在肌肉細胞中以環型分子存在，不能復制，并不能整合到宿主細胞染色體中。肌肉細胞中特有的橫管系統與細胞外空間有直接交通，因而可能介導質粒 DNA的內吞作用。而且橫紋肌中溶酶體和DNA酶的含量較低，可能也是質粒DNA能在細胞中存在較長時間的原因。微離子轟擊介導的DNA免疫即基因槍。
常見的免疫接種的途徑
常用的有皮上劃痕、皮內、皮下、口服與氣霧等途徑。死疫苗多用皮下注射法，活疫苗則可用皮內注射、皮上劃痕或以自然感染途徑接種，尤以后者為佳。如脊髓灰質炎活疫苗以口服為佳，而流感疫苗則以氣霧吸入為佳。
DNA疫苗的主要接種途徑
直接肌肉注射注射的DNA在肌肉細胞中以環型分子存在，不能復制，并不能整合到宿主細胞染色體中。肌肉細胞中特有的橫管系統與細胞外空間有直接交通，因而可能介導質粒 DNA的內吞作用。而且橫紋肌中溶酶體和DNA酶的含量較低，可能也是質粒DNA能在細胞中存在較長時間的原因。微離子轟擊介導的DNA免疫即基因槍。
關于破傷風疫苗的接種部位、途徑和劑量介紹
（1）DTaP：上臂外側三角肌肌內注射，0.5ml。 （2）DTaP－Hib：肌內注射，推薦部位為臀部外上方1/4處。每1次人用劑量的無細胞百白破聯合疫苗和b型流感嗜血桿菌結合疫苗各0.5ml混合，每次1ml。 （3）DTaP－IPV/Hib：上臂外側三角肌或大腿前外側（中間三分之一處）肌內
實驗動物的編號、抓取和固定方法
1、實驗動物的編號實驗時，為了分組和辨別的方便，常需事先為實驗動物進行編號。常用的編號方法如下：1）染料標記法：常用染料——紅色染料：5％中性紅或品紅液；黃色染料：3%～5％苦味酸溶液；咖啡色染料：2％硝酸銀溶液；黑色染料：煤焦油的乙醇溶液。標記規則——根據實驗動物被毛顏色的不同選擇不同化學藥品涂染
實驗動物分組和標記編號方法
一、分組（一）?? 分組原則實驗動物分組應嚴格按照隨機分組的原則進行，使每只動物都有同等機會被分配到各個實驗組中去，盡量避免人為因素對實驗造成的影響。（二）?? 建立對照組實驗動物分組時應特別注意建立對照組。對照組可分自身對照組和平行對照組。1．自身對照組自身對照是把實驗動物本身在動物實驗前、后兩階
實驗動物實驗標本的采集實驗——動物采血方法
實驗材料實驗動物試劑、試劑盒消毒液儀器、耗材注射器實驗步驟(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：適用于少量采血，如制作血涂片、白細胞計數等。動物麻醉后，將尾尖剪去約 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。小鼠可每次采血約 0. 1 ml, 大鼠約 0.4 ml。
狂犬病基礎免疫階段的接種途徑、部位和劑量
肌肉注射。2歲及以上兒童和成年人于上臂三角肌注射；2歲以下兒童于大腿前外側肌注射。禁止在臀部肌肉注射。每劑0.5ml或1.0ml（具體參照產品規格或產品說明書）。
狂犬病基礎免疫階段的接種途徑、部位和劑量
肌肉注射。2歲及以上兒童和成年人于上臂三角肌注射；2歲以下兒童于大腿前外側肌注射。禁止在臀部肌肉注射。每劑0.5ml或1.0ml（具體參照產品規格或產品說明書）。
實驗動物給藥和采血方法（二）
4.后肢脛部皮下靜脈取血將兔仰臥固定于兔固定板上，或由一人將兔固定好。拔去脛部被毛，在脛部上端股部扎以橡皮管，則在脛部外側淺表皮下，可清楚見到皮下靜脈。用左手兩指固定好靜脈，右手取帶有5（1/2）號針頭的注射器內皮下靜脈平行方向刺入血管，抽一下針栓，如血進入注射器，表示針頭已刺入血管，即可取血。一次
實驗動物給藥和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血當所需血量很少時采用本法。固定動物并露出鼠尾。將尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的溫水中數分鐘，使尾部血管充盈。再將尾擦干，用銳器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，讓血液自由滴入盛器或用血紅蛋白吸管吸取，采血結束，傷口消毒并壓迫止血。也可在尾部作一橫切口，割破尾動脈或靜脈
動物的注射方法實驗
實驗方法原理 實驗材料 小白鼠試劑、試劑盒 滅菌生理鹽水儀器、耗材 注射器（1 ml）6 號針頭消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花實驗步驟 1. 注射器的準備與消毒注射器與針頭一般用高壓蒸氣滅菌或干熱滅菌比較徹底，而且可以預先準備好，但也可用煮沸消毒法，不過消毒后不能久放。此處主要介紹煮沸
動物實驗的常用方法
在醫學教學、科研和醫學工作中，不論是從事基礎醫學的還是臨床醫學、預防醫學，都需要用實驗動物來進行各種實驗。通過對動物的實驗的觀察和分析，來研究和解決醫學上存在的許多問題，動物實驗方法已成為醫學科學研究和教學工作中必不可少的重要手段。動物實驗方法是多種多樣的，在醫學的各個領域內都有其不同的應用，其中一
實驗動物的處死方法
實驗動物的處死方法很多，應根據動物實驗目的、實驗動物品種（品系）、以及需要采集標本的部位等因素，選擇不同的處死方法。無論采用哪一種方法，都應遵循安樂死的原則。安樂死是指在不影響動物實驗結果的前提下，使實驗動物短時間無痛苦地死亡。處死實驗動物時應注意，首先要保證實驗人員的安全；其次要確認實驗動物已經死
實驗動物的麻醉方法
實驗動物的麻醉方法1．全身麻醉（1）吸入法 用一塊圓玻璃板和一個鐘罩或一個密閉的玻璃箱作為揮發性麻醉劑的容器，多選用*作麻藥。麻醉時用幾個棉球，將*倒可其中，迅速轉入鐘罩或箱內，讓其揮發，然后把待麻醉動物投入，約隔4--6分鐘即可麻醉，麻醉后應立即取出，并準備一個蘸有*的棉球小燒杯，在動物麻醚變淺時
實驗動物的麻醉方法
1．全身麻醉 （1）吸入法 用一塊圓玻璃板和一個鐘罩或一個密閉的玻璃箱作為揮發性麻醉劑的容器，多選用乙醚作麻藥。麻醉時用幾個棉球，將乙醚倒可其中，迅速轉入鐘罩或箱內，讓其揮發，然后把待麻醉動物投入，約隔4-6分鐘即可麻醉，麻醉后應立即取出，并準備一個蘸有乙醚的棉球小燒杯，在動物麻醚變淺時給套在鼻