溶解引物需要什么水
先離心！然后加入適量的水或TE溶解。一般配制成較高濃度的母液（約100μM），保存于-20℃。使用前取出其中一部分用ddH2O配制成10μM或20μM的工作液。引物濃度不宜偏高，濃度過高有兩個弊端：一是容易形成引物二聚體（primer-dimer），二是當擴增微量靶序列并且起始材料又比較粗時，容易產生非特異性產物。一般說來，用低濃度引物不僅經濟，而且反應特異性也較好。一般終濃度用0.25-0.5pM/μl較好。1 引物的分子量如何計算？ 比如：AAGCTTTTACCGC的分子量是多少？2 OD值，1個OD值是不是等于40UG。3 質量數，質量數的含義是什么，怎么計算？4摩爾數（μmol）和終濃度(pM)和稀釋水量（μl）是不是計算稀釋引物都要用到以上四點的各個參數？具體的公式是什么呢？合成引物的單子上應該有算法：1OD=33ug1個堿基的分子量=324.5（以上為近似值，通常都這樣用）1條引物的分子量=堿基數*324.5質量數=......閱讀全文
引物溶解引物保存
1. 如何測定引物的OD值？用紫外分光光度計在260nm波長測定溶液的吸光度來定量，請注意紫外分光光度計的使用，測定時溶液的吸光度最好稀釋到0.2~0.8之間（吸光度太高或太低會有較大的誤差）。DNA干粉用一定體積的水充分振蕩溶解以后，取部分溶液稀釋到1 ml 并在1 ml 標準比色皿中測定其吸光度
引物溶解引物保存
1. ?如何測定引物的OD值？ 用紫外分光光度計在260nm波長測定溶液的吸光度來定量，請注意紫外分光光度計的使用，測定時溶液的吸光度最好稀釋到0.2~0.8之間（吸光度太高或太低會有較大的誤差）。DNA干粉用一定體積的水充分振蕩溶解以后，取部分溶液稀釋到1 ml 并在1 ml 標準比色皿中測定其
如何溶解引物？
干燥后的引物質地非常疏松，開蓋前最好離心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，將引物粉末收集到管底。根據計算出的體積加入去離子無菌水或10mM Tris pH7.5緩沖液，室溫放置幾分鐘，振蕩助溶，離心將溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸餾水，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物在這種
引物溶解稀釋方法
在實驗室進行分子克隆實驗時，經常需要合成大量的引物，而這些合成的引物首先要進行適當的稀釋才能使用。如果不稀釋就使用引物，往往造成引物的浪費和過早的活性喪失，更有一些被污染而不能使用。因此，建議對合成的引物先進行稀釋，然后使用。稀釋的引物利于保存和應用。現將方法簡單敘述如下：1. Oligo DNA是
如何溶解和保存引物？
如何溶解引物？干燥后的引物質地非常疏松，開蓋前最好瞬時離心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，將引物粉末收集到管底。根據計算出的體積加入去離子無菌水或TE(pH8.0)緩沖液，室溫放置幾分鐘，振蕩助溶，離心將溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸餾水，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物
已經溶解的引物的問題
已經溶解的引物，為什么原先使用正常，而過一段時間再使用就不好了？如果您溶解引物的水pH過低或污染了菌或核酸酶，會使引物降解。使用時沒有充分解凍混合，液體不均勻也可能會造成引物加入量不準確。建議分裝引物，避免反復凍溶。建議使用10mM Tris pH7.5緩沖液溶解引物，因為有些蒸餾水的pH值
溶解引物需要什么水
先離心！然后加入適量的水或TE溶解。一般配制成較高濃度的母液（約100μM），保存于-20℃。使用前取出其中一部分用ddH2O配制成10μM或20μM的工作液。引物濃度不宜偏高，濃度過高有兩個弊端：一是容易形成引物二聚體（primer-dimer），二是當擴增微量靶序列并且起始材料又比較粗時，容易產
怎么通過看擴增曲線和溶解曲線看引物的好差
具體要看你做什么實驗,模板和擴增的基因實怎樣的.1、擴增曲線：一般來說如果你做雙ΔCT法那么你的擴增曲線必須是S型,有明顯的四個時期,且復孔的CT值盡量一致,相差不要超過0.5個CT值（上限是1個CT值）；同一個基因在...
引物設計的引物設計原則
1、引物長度一般為15-30bp，常用的為18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般為40%-60%，以45-55%為宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所對應的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之間，Tm值曲線以選取72度附近為佳，5'到 3
快速了解反轉錄引物隨機引物
隨機引物是指當特定mRNA由于含有使逆轉錄酶終止的序列而難于拷貝其全長序列時，可采用隨機六聚體這一非特異的引物來拷貝全長mRNA。 1.特異性引物一般在增低豐度目的基因才選擇使用，用得比較少。一般都推薦用Oligo(dT)或隨機引物代替基因特異性引物。由于rna的二級結構破壞不完全，導致特異性