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    細胞RNA含量樣品的制備及分析

    實驗材料 單細胞懸液試劑、試劑盒 PY 試劑醋酸緩沖液磷酸緩沖液DNA 酶消化液實驗步驟 一、試劑配制1. PY 試劑的配制:PY 1.0 g 以 100 ml 蒸餾水溶解,配成母液,置 4℃ 冰箱保存。PY 工作液:取 1 ml PY 母液,加入 1 mol/L pH 4.7 的醋酸緩沖液 100 ml,稀釋為 0.01% 的濃度。2. 1.0 mol/L pH 4.7 醋酸緩沖液的配制:冰醋酸 11.55 ml 加蒸餾水至 1000 ml;無水醋酸鈉 16.4 g 加蒸餾水至 1000 ml;分別取上述兩種液體 255 ml 和 245 mI,再加入 200 ml 蒸餾水即成。3. 配制 pH 7.2 的磷酸緩沖液。4. DNA 酶消化液的制備:DNA 酶 0.05 mg/ml,0.25 mol/L 枸櫞酸,2.5 mol/L TrisHCl,調 pH 為 6.0。二、染色程序1. 制備單細胞懸液,濃度為 1x106/ml。......閱讀全文

    流式細胞技術基本原理應用和發展趨勢

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    RT-PCR實驗方法大全

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    流式細胞術在高等植物研究中的應用

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    流式細胞儀技術概述

    流式細胞儀技術,主要是測量群體中單個細胞經適當染色后其成分所發出的散射光和熒光,經染色的細胞在懸液中以單行流過高強度光源的焦點,當每個細胞經過焦點時,發出一束散射光/或熒光。它們經過過濾及光鏡系統收集到達一個光電檢測器(光電倍增管或一個固態裝置),光檢測器把散射光定量轉化成電信號,經數字轉換器進行數

    流式細胞儀技術概述

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    流式細胞術在高等植物研究中的應用(二)

    3.流式細胞術在高等植物中的應用3.1應用于植物中的特殊性由于植物細胞與動物細胞在結構上的差異,例如植物細胞具有細胞壁、特殊細胞器以及中央液泡等,因此流式細胞術應用于植物細胞時,在樣品制備、染色、儀器的改造等方面都應適應植物細胞的上述特點。3.1.1制備植物染色體懸液的材料1984年De Laat和

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    應用SpectraMax微孔板檢測系統和CyQUANT試劑盒檢測細胞增殖3

    RNA酶處理、基于DNA含量做標準曲線的CyQUANT實驗法細胞增殖同樣可以用DNA含量來評價并作出標準曲線。根據細胞曲線可計算出DNA含量,細胞裂解液經過RNA酶處理就排除了RNA對結果的干擾。在本應用說明中,列出了用DNA含量做標準曲線來定量細胞樣品的設置步驟。準備試劑步驟1:制備1X細胞裂解液

    RNA提取和RT-PCR

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    PCR儀的用途及使用方法

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    RT-PCR實驗方法總結大全

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    流式細胞技術精彩回顧

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