RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)2
關于平臺期和線性期的問題，實際上線性期是指數期，只不過碰巧2的冥和2的倍數是相同的。看上去任何一個時期都可以，實際上是不對的，因為牽涉到酶促動力學的問題，這個我也不懂，有一些專門的文章，好像，涉及到很多化學的東西。我們學醫的，也沒必要知道那些，但是其中主要是因為模板引物酶原料和buffer之間的關系，這種反應單靠改變其中一種成分沒有用的，酶一直是過量，再加酶也沒用，引物ntp都是這樣。煙鬼正傳，最好選線性期的開始階段，但是要在你的凝膠成像分辨范圍內，所以選一個這兩種的契合點。給你一張圖你就明白了，再開始的時候酸的是切線，這圖我在 *** 帖過。關于引物設計，再可能的情況下，除了常規要求之外，最好兼顧跨內含子（不過，根據要求，還可以專門設計隔內含子的，這樣還可以用于基因組PCR）、長度小于500bp－600bp等等。 引物當然要設計成一樣的退火溫度，即使不再一管中，也要一樣的，要在一臺機器里啊。我的引物占了冰箱一格，大部分......閱讀全文
RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)2
關于平臺期和線性期的問題，實際上線性期是指數期，只不過碰巧2的冥和2的倍數是相同的。看上去任何一個時期都可以，實際上是不對的，因為牽涉到酶促動力學的問題，這個我也不懂，有一些專門的文章，好像，涉及到很多化學的東西。我們學醫的，也沒必要知道那些，但是其中主要是因為模板引物酶原料和buffer之間的關系
RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)3
4. 配制的溶液應盡可能的用0.1% DEPC，在37℃處理12hr以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑，應當用DEPC處理過的無菌雙蒸水配制，然后經 0.22μm濾膜過濾除菌。5. 操作人員戴一次性口罩、帽子、手套，實驗過程中手套要勤換。6. 設置RNA操作專用實驗室，所有器
RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)4
3． 由于與反義RNA探針雜交的樣品RNA僅為該RNA分子的部分片段，因此，部分降解的RNA樣品仍可進行分析。4． 步驟較少，耗時短。與Northern雜交相比，省去了轉膜和洗膜的過程。5． RNA-RNA雜交體穩定性高，無探針自身復性問題，無須封閉。6． 一個雜交體系中可同時進行多個探針雜交，無競
RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)5
室溫下充分混勻，離心10000g×2min。取上層液置另一0.5 ml離心管中，加入100μl氯仿，混勻，離心10000g×2min。將上層液轉移至另一0.5ml 離心管中，再加入3M NaAc 10μl、預冷無水乙醇250μl，混勻后，-20OC靜置30min。4OC離心13500g×10
RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)6
可能問題出在標本的保存：一般四小時之內就應處理，分離出細胞說的是套式PCR,可以在你的第一次PCR兩個引物內,再設計一對引物進行第二次PCR就行了如果你的第一次PCR剛好包括目的片段,那只好設計個更長的了第二次的引物設計要求可以低一點以50μl體系為例引物各1μl第一次PCR產物5μl二次PCR和巢
RTPCR實驗方法大全(抽提RNA，RT，PCR)1
RT-PCR實驗有三步：抽提RNA，RT，PCR。要求：1.做RT前必需測RNA濃度，逆轉錄體系對RNA量還是有一些要求，常用500ng或1ug。2. RT按要求做，一般不會出太大問題。3. PCR，按常規。但如需擴長片段，則對前兩步要求較高，需要有完整的cDNA存在，不是單改變Mg2+濃度、退火溫
RTPCR實驗方法大全
RT-PCR實驗有三步：抽提RNA，RT，PCR。?要求：1.做RT前必需測RNA濃度，逆轉錄體系對RNA量還是有一些要求，常用500ng或1ug。2. RT按要求做，一般不會出太大問題。?3. PCR，按常規。但如需擴長片段，則對前兩步要求較高，需要有完整的cDNA存在，不是單改變Mg2 濃度、退
RTPCR實驗方法總結大全
生物谷：?RT-PCR實驗有三步：抽提RNA，RT，PCR。要求：1.做RT前必需測RNA濃度，逆轉錄體系對RNA量還是有一些要求，常用500ng或1ug。2. RT按要求做，一般不會出太大問題。3. PCR，按常規。但如需擴長片段，則對前兩步要求較高，需要有完整的cDNA存在，不是單改變Mg2+濃
RTPCR實驗方法總結大全
生物谷： RT-PCR實驗有三步：抽提RNA，RT，PCR。?要求：1.做RT前必需測RNA濃度，逆轉錄體系對RNA量還是有一些要求，常用500ng或1ug。2. RT按要求做，一般不會出太大問題。?3. PCR，按常規。但如需擴長片段，則對前兩步要求較高，需要有完整的cDNA存在，不是單改變Mg2
RNA提取與RTPCR(2)
融解RNA一般使用TE。 保存RNA應該盡量低溫。為了防止痕量RNase的污染，從富含RNase的樣品（如胰臟、肝臟）中分離到的 RNA需要貯存在甲醛中以保存高質量的RNA，對于長期貯存更是如此。從大鼠肝臟中提取的RNA，在水中貯存一個星期就基本降解了，而從大鼠脾臟中提取的 RNA，在水
RTPCR實驗方法總結(2)
寡聚(dT)纖維素柱純化mRNA一、試劑準備1．3M醋酸鈉（pH 5.2）2．0.1M NaOH3．1×上樣緩沖液：20mM Tris-HCl(pH 7.6)；0.5M NaCl；1M EDTA（pH 8.0）；0.1%SLS(十二烷基氨酸鈉。配制時可先配制Tris-HCl(pH 7.6)、NaCl
RTPCR實驗方法
RT-PCR定義：是指對組織或細胞的總RNA進行抽提，把RNA反轉錄為cDNA，然后設計目的基因引物進行PCR，瓊脂糖電泳并數碼拍照，分析電泳條帶灰度值，判斷目的基因mRNA轉錄水平的相對量的變化。 RT-PCR流程簡介 一、抽提RNA： 1、防止RNA酶污染 180℃的高溫下
RTPCR技術2
三：操作１：反轉錄反應按下表準備反應液樣品 體積 終濃度５×反應緩沖液 10μl １×dNTP混合液 1μl 0.2mM下游引物 50pmol* 1μm上游引物 50pmol* 1μm25mM MgSO4 2μL 1mMAMV反轉錄酶 1μl 0.1μ/μlTflDNA聚合酶 1μl 0.1μ/μl
RNA提取和RTPCR
在做Northern等雜交實驗、構建cDNA文庫、獲取能夠編碼真核生物蛋白的基因、獲得RNA病毒基因時，會用到RNA提取和RT-PCR技術。真核生物的基因組是DNA，為什么不直接從DNA PCR得到我們需要的基因呢？因為真核生物的基因含有大量的非編碼區，稱為內元（intron），真正編碼蛋白的區段是
RNA提取和RTPCR
真核生物的基因組是DNA，為什么不直接從DNA?PCR得到我們需要的基因呢？因為真核生物的基因含有大量的非編碼區，稱為內元（intron），真正編碼蛋白的區段是被這些內元隔開的，這些編碼區叫做外元（exon）。真核生物的DNA轉錄成為RNA之后，經過剪切和拼接，去掉這些非編碼區，才形成成熟的mRNA
RNA提取與RTPCR
1．RNA的提取 RNA的提取其實原理很簡單：通過變性劑破碎細胞或者組織，然后經過氯仿等有機溶劑抽提RNA，再經過沉淀，洗滌，晾干，zui后溶解。但是由于RNA酶無處不在，隨時可能將RNA降解，所以實驗中有很多地方需要注意，稍有疏忽就會前功盡棄。 1．1分離高質量RNA 成功的cDNA合成來
線蟲總RNA提取及RTPCR實驗方法
C. elegans RNA Isolation and RT-PCRReagents Needed:M9 (common stock)Trizol (stored at 4oC)chloroform2-propanol70% EtOHRNase-free H2OiScript cDNA Synth
RT－PCR技術及RNA提取策略2
一般的瓊脂糖凝膠電泳，注意不要用甲醛變性電泳（又不是做northern，實在沒有必要）。電泳槽注意一定不要用DEPC處理，一定要保證電泳體系中有少量的RNAase存在。分別在加樣孔中加入1，2，3μlRNA抽提溶液。在旁邊加入DNA marker。1%瓊脂糖凝膠，10V/cm的電壓，電泳10
RTPCR實驗方法總結
RT-PCR實驗有三步：抽提RNA，RT，PCR。要求：1.做RT前必需測RNA濃度，逆轉錄體系對RNA量還是有一些要求，常用500ng或1ug。2. RT按要求做，一般不會出太大問題。?3. PCR，按常規。但如需擴長片段，則對前兩步要求較高，需要有完整的cDNA存在，不是單改變Mg2+濃度、退火
microRNA－RTPCR實驗方法
Stem-loop實時定量RT PCR傳統實時定量RT PCR只能檢測到miRNA前體，而Stem-loop實時定量RT PCR技術可以解決這一問題。Stem loop實時定量RT PCR是一項高特異度、敏感度的檢測miRNA表達的實驗技術，包括設計具有莖環（stem loop）結構的反
定量RTPCR－（Quantitative－RTPCR）
Application:?Quantitative RT-PCR?is used to quantify mRNA in both relative and absolute terms. It can be applied for the quantification of mRNA expres
RNA提取與RTPCR(1)
在做Northern等雜交實驗、構建cDNA文庫、獲取能夠編碼真核生物蛋白的基因、獲得RNA病毒基因時，會用到RNA提取和RT-PCR技術。 真核生物的基因組是DNA，為什么不直接從DNA PCR得到我們需要的基因呢？因為真核生物的基因含有大量的非編碼區，稱為內元（intron），真正編碼蛋
RNA提取與RTPCR(4)
2.8 小量RNA檢測方法的提高 當僅有小量RNA時，RT-PCR尤其具有挑戰性。在RNA分離過程中加入的作為載體的糖元有助于增加小量樣品的產量。可以在加入Trizol的同時加入無RNase的糖元。糖元是水溶性的，可以同RNA保持在水相中以輔助隨后的沉淀。對于小于50mg的組織或106個培養細胞
RNA提取與RTPCR(3)
2.3 RT-PCR的引物設計 RT-PCR引物設計和一般PCR引物設計可以遵循同樣的原則。細心地進行引物設計是PCR中最重要的一步。理想的引物對只同目的序列兩側的單一序列而非其他序列退火。設計糟糕的引物可能會同擴增其他的非目的序列。設計理想的引物都有以下共同的特點，而設計失敗的引物則各有各的缺
RTPCR實驗流程
1、技術原理實時熒光定量PCR是在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號累積實時檢測整個PCR進程，zui后通過Ct值與標準曲線的處理對未知樣本進行定量分析，是zui常用的基因表達分析技術。有絕對定量與相對定量兩種定量分析方法。??圖 各種熒光定量曲線示意圖2、服務流程及質控2.1?實驗流程樣本
實時－RTPCR－實驗
? ? ? ? ? ? 試劑、試劑盒 RNA 模板 DNA 酶緩沖液 DNA 酶 I DEPC 處理的水 oligo(dT) MgCl2 dNT
實時－RTPCR－實驗
試劑、試劑盒 RNA 模板DNA 酶緩沖液 DNA 酶 IDEPC 處理的水oligo(dT)MgCl2 dNTPEDTA實驗步驟 —、材料1. 緩沖液、溶液和試劑①10ul 消化體系的組分。RNA 模板（最多 1ug/10ul) ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? xul10X
實時－RTPCR－實驗
本方法使用Superscription反轉錄系統合成cDNA。進行實時PCR時，FAM或JOE熒光基團既可以標記正向引物，也可以標記反向引物。可以用Trizol試劑提取RNA或按第10章描述的方法提取RNA。樣品中的基因組DNA用DNaseI消化掉（參照第10章）。本實驗來源于PCR實驗指南（第二版
RTPCR實驗步驟
實驗材料：水稻葉片的 RNA 。實驗原理：目前?PCR?技術只能擴增?DNA?模板，對 RNA 模板不能直接擴增。mRNA反轉錄生成的?cDNA?可作為 PCR 的模板進行擴增，這種在 mRNA 反轉錄后進行的 PCR 擴增稱為?RT-PCR?。 RT-PCR 比 Northern 雜交更靈敏，對
RTPCR實驗步驟
一、組織抽提：1.???????取組織塊50-100㎎用液氮在研缽中研磨成粉末2.???????移入玻璃勻漿器加入1ml Trizol?抽打勻漿3.???????移入1.5ml新離心管用5 ml針頭抽打4.???????冰上孵育5分鐘5.???????離心12,000g??4℃??5分鐘?取上清液移