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  • 哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗

    分析基因的功能常需要形成含有穩定整合了該基因的哺乳動物細胞系。在轉染中大約有1/104細胞將穩定整合外源因而可用一顯性(正向)選擇標記來分離穩定的轉化細胞。用可高效轉染的細胞系來確保轉染成功。另外,應包括合適的對照以確定目的基因無細胞毒性。實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒完全培養液儀器、耗材培養箱離心管實驗步驟1. 確定所要轉染的細抱系能呈獨立集落生長。對于貼壁細胞,在10 cm 組織培養培養皿中接種約100個細胞,培養10~12天,毎4天換液1次。亞甲藍染色后對成活的細胞集落進行計數。 2. 確定母代細胞的選擇條件:將一培養皿上生長匯片的細胞按不小于1:15的比例分傳于含有不同藥物濃度的培養液中。培養10天。用合適的選擇培養液每4天換液1次, 并檢查活細胞。 3. 確定轉染母代細胞的最有效的方法。可選用磷酸鈣或電穿孔方法。對于磷酸鈣轉染,在加DNA的前1天,將母代細胞按1......閱讀全文

    哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗

    基本方案 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 哺乳動物細胞 試劑、試劑盒

    哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗

    分析基因的功能常需要形成含有穩定整合了該基因的哺乳動物細胞系。在轉染中大約有1/104細胞將穩定整合外源因而可用一顯性(正向)選擇標記來分離穩定的轉化細胞。用可高效轉染的細胞系來確保轉染成功。另外,應包括合適的對照以確定目的基因無細胞毒性。實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒完全培養液儀器、耗材培養箱離

    哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗

    實驗材料 哺乳動物細胞試劑、試劑盒 完全培養液儀器、耗材 培養箱離心管實驗步驟 1. ?確定所要轉染的細抱系能呈獨立集落生長。對于貼壁細胞,在10 cm 組織培養培養皿中接種約100個細胞,培養10~12天,毎4天換液1次。亞甲藍染色后對成活的細胞集落進行計數。?2. ?確定母代細胞的選擇條件:將一

    電穿孔轉染真核細胞實驗——電穿孔轉染哺乳動物細胞

    電穿孔法應用高壓電擊短暫或穩定地將DNA導人細胞,是一種目前大受好評的方法。它適用于多數類型的細胞,既可產生高頻率的穩定轉染,又可產生短暫的基因表達,并且由于其所需步驟甚少,因而比其他技術更為容易。實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒完全培養液電穿孔緩沖液儀器、耗材電穿孔儀器電擊池實驗步驟1. ?在完全

    脂質體介導的真核細胞轉染實驗——哺乳動物細胞選擇標記

    哺乳動物細胞的選擇標記實驗材料哺乳動物實驗步驟一、腺苷脫氨酶(ADA)?1. ?選擇條件:培養液中加10 μg/ml?胸腺嘧啶脫氧核苷,15 μg/ml?次黃嘌呤,4 μmol/l 腺嘌呤-9-β-D-呋喃木糖苷(Xyl-A),及0.01~0.3 μmol/l 2‘-脫氧助間型霉索(dCF)。胎牛血

    轉染細胞的穩定篩選實驗

    本實驗主要用于獲得含目的外源基因的真核細胞。實驗方法原理外源基因轉染真核細胞后整合入基因組DNA,能夠長期存在于細胞中,隨染色體復制而傳給子代。外源基因進入培養細胞一般要經過幾天才能夠整合入基因組DNA。實驗材料轉染細胞試劑、試劑盒抗生素培養基胰酶儀器、耗材6孔板24孔板96孔板CO2培養箱濾紙片培

    轉染細胞的穩定篩選實驗

    ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 外源基因轉染真核細胞后整合入基因組DNA,能夠長期存在于細胞中,隨染色體復制而傳給子代。外源基因進入培養細胞一般要經過幾天才能夠整合入基因組DNA。 實驗材料

    轉染細胞的穩定篩選實驗

    實驗材料?轉染細胞試劑、試劑盒?抗生素培養基胰酶儀器、耗材?6孔板24孔板96孔板CO2培養箱濾紙片培養瓶實驗步驟?1.確定抗生素作用的最佳濃度:不同的細胞株對各種抗生素有不同的敏感性,因此在篩選前要做預試驗,確定抗生素對所選擇細胞的最低作用濃度。1) 提前24 小時在96 孔板或24 孔板中接種細

    哺乳動物細胞基因突變試驗

      哺乳動物體外培養細胞的基因正向突變試驗常用的測試系統有小鼠淋巴瘤L5178Y細胞,中國倉鼠肺V79細胞和卵巢CHO細胞的三個基因位點的突變,即次黃嘌呤磷酸核糖轉移酶(HGPRT)、胸苷激酶(TK)及Na+/K+ATP酶(OUA)位點。HGRPT和Na+/K+ATP酶位點突變可用于上述三種細胞,O

    CHO細胞的穩定轉染與基因表達

    1、pcDNA3.1+-gD的線性化: pcDNA3.1+使用說明書推薦了以下幾個酶作為線性化酶(BglⅡ MfeⅡ Bst1107Ⅰ Eam1105Ⅰ PvuⅠ ScaⅠ SspⅠ),通過DNAMAN分析gD序列發現其帶有MfeⅡ酶切位點。2、轉染前一天,在60mm的dish中接種8×105個細胞

    哺乳動物細胞瞬時基因轉移法制備重組蛋白實驗

    一、轉染方法對于脂質體轉染 (Upofection), 可以從商業途徑獲得許多配方,這些配方都具有單一的ZL化組分,而且毫無疑問,它們中的大部分都能非常有效地將質粒 D N A 轉 人 細 胞 。其缺點是價格不菲—- 在使用這些試劑時,對于超出數百毫升規模的瞬時轉染,經濟上是不可行的。大

    哺乳動物細胞瞬時基因轉移法制備重組蛋白實驗

    實驗步驟 一、轉染方法 對于脂質體轉染 (Upofection), 可以從商業途徑獲得許多配方,這些配方都具有單一的ZL化組分,而且毫無疑問,它們中的大部分都能非常有效地將質粒 D N A 轉 人 細 胞 。其缺點是價格不菲

    哺乳動物細胞瞬時基因轉移法制備重組蛋白實驗

    報道顯 TK,在 過 去 的 1 0 年 ,已經開發出 了多種高效的瞬時轉染(transient transfection) 方法 , 它們可 以 滿 足 甚 至 超出 了 上 述 需 求 。 目 前 蛋 白 質 的 瞬 轉 表 達 主 要 是 在H E K 2 9 3 衍生的細胞系中進行, 而同時

    Lipofectamine?2000轉染Stealth?-RNA或者siRNA進入哺乳動物細胞

    前言Lipofectamine? 2000試劑是一項ZL配方,用于高效轉染Stealth? RNA或者短的干擾RNA(siRNA)到哺乳動物細胞,以進行RNAi分析(1,2)。該說明書提供了一般的指導以及使用Lipofectamine? 2000轉染Stealth? RNA或者siRNAj進入哺乳動

    哺乳動物細胞體外剪接分析實驗

    剪接反應的典型做法是使用核提取物,即 S100 提取物補充 SR 蛋白或粗提取物的部分純化組分,最常使用的是 HeLa 細胞的提取物。前體 mRNA 底物通常采用噬菌體聚合酶體外轉錄的方法來制備。本實驗來源「RNA 實驗指導手冊」主編:鄭曉飛。實驗方法原理剪接反應的典型做法是使用核提取物,即 S10

    哺乳動物細胞體外剪接分析實驗

    ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 剪接反應的典型做法是使用核提取物,即 S100 提取物補充 SR 蛋白或粗提取物的部分純化組分,最常使用的是 HeLa 細胞的提取物。前體 mRNA 底物通常采用噬菌體聚合酶體外轉錄的方法來制備。

    哺乳動物細胞體外剪接分析實驗

    實驗方法原理 剪接反應的典型做法是使用核提取物,即 S100 提取物補充 SR 蛋白或粗提取物的部分純化組分,最常使用的是 HeLa 細胞的提取物。前體 mRNA 底物通常采用噬菌體聚合酶體外轉錄的方法來制備。實驗材料 前體 mRNA 底物試劑、試劑盒 ATP CP 混合物HEPES-KOH聚乙烯醇

    哺乳動物細胞實驗室的構建方案

    一、實驗室設計細胞培養是一種無菌操作技術,要求工作環境和條件必須保證無微生物污染和不受其它有害因素的影響。細胞培養室和設計原則是防止微生物污染和有害因素影響,要求工作環境清潔、空氣清新,干燥和無煙塵。細胞培養室的設計原則一般是無菌操作區設在室內較少走動的內側,常規操作和封閉培養于一室,為10萬級潔凈

    哺乳動物細胞實驗室的構建方案

    一、實驗室設計 細胞培養是一種無菌操作技術,要求工作環境和條件必須保證無微生物污染和不受其它有害因素的影響。細胞培養室和設計原則是防止微生物污染和有害因素影響,要求工作環境清潔、空氣清新,干燥和無煙塵。細胞培養室的設計原則一般是無菌操作區設在室內較少走動的內側,常規操作和封閉培養于一室,為10萬

    脂質體介導的真核細胞轉染實驗——脂質體進行穩定轉染

    實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒DMEM儀器、耗材培養箱離心管實驗步驟1. ?接種細胞(見“脂質體介導短暫表達”步驟1)長至50%匯片。?2. ?制備DNA/脂質體混合物,轉染細胞(見“脂質體介導短暫表達”步驟2和3)。3. ?每孔細胞加入1 ml DMEM-20完全培養液,37℃ 培養箱培養48

    哺乳動物細胞的實驗室的培養器皿

      常用細胞培養器皿有培養瓶、培養板、培養皿等。常準備量是使用量的三倍。器  皿應選擇透明度好、無毒、利于細胞粘附和生長的材料,常用一次性聚苯乙烯材料制品  或中性硬度玻璃制品。常用的器皿有下面幾種。  (1)液體儲存瓶:用于儲存各種配制好的培養液、血清等液體,常用規格有500ml、250ml、  

    哺乳動物細胞的生物特征

      哺乳動物是全身被毛,運動快速,恒溫,胎生和哺乳的脊椎動物.它是脊椎動物中軀體結構,功能和行為最復雜的一個高等動物類群.鳥類和哺乳類都是從爬行動物起源的,它們分別以不同的方式適應陸棲生活所遇到的許多基本矛盾(陸地上快速運動,防止體內水分蒸發,完善的神經系統和繁殖方式),并在新陳代謝水平全面提高的基

    動物細胞的幾種轉染方法對比

    脂質體法采用陽離子脂質轉染體,具有較高的轉染效率,不但可以轉染其他化學方法不易轉染的細胞系,而且還能轉染從寡核苷酸到人工酵母染色體不同長度的DNA,以及RNA,和蛋白質.此外,脂質體體外轉染同時適用于瞬時表達和穩定表達,與以往不同的是脂質體還可以介導DNA和RNA轉入動物和人的體內用于基因治療。人工

    哺乳動物細胞的實驗室設計和常用設施

      實驗室設計  細胞培養是一種無菌操作技術,要求工作環境和條件必須保證無微生物污染和不受其它有害因素的影響。細胞培養室和設計原則是防止微生物污染和有害因素影響,要求工作環境清潔、空氣清新,干燥和無煙塵。細胞培養室的設計原則一般是無菌操作區設在室內較少走動的內側,常規操作和封閉培養于一室,而洗刷消毒

    蛋白質在哺乳動物細胞中表達實驗

    實驗材料載體(如 CDM 8)實驗步驟1. 將目的基因亞克隆至合適的載體中得到所需的重組 DNA 。用小量法(5 ml 培養液)或用 CsCl/溴化乙錠離心法純化重組 DNA。2. 在轉染的前一天,將 COS-7 細胞以約 20% 匯片的數量種入含 DMEM-2 CS 培養基的 100 mm 培養皿

    蛋白質在哺乳動物細胞中表達實驗

    基本方案 用COS細胞瞬時表達 ? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 實驗材料 載體(如 CD

    蛋白質在哺乳動物細胞中表達實驗

    實驗方法原理 實驗材料 載體(如 CDM 8)實驗步驟 1. 將目的基因亞克隆至合適的載體中得到所需的重組 DNA 。用小量法(5 ml 培養液)或用 CsCl/溴化乙錠離心法純化重組 DNA。2. 在轉染的前一天,將 COS-7 細胞以約 20% 匯片的數量種入含 DMEM-2 CS 培養基的 1

    哺乳動物細胞真核表達系統的優勢有人想知道嗎

    ?  哺乳動物細胞真核表達系統則是通過脂質體或者是PEI的等轉染試劑在體外通過和質粒形成復合體, 將質粒導入細胞后進行瞬時表達。稱為瞬時表達的原因是因為質粒在真核細胞中不能擴增。并且不斷被細胞所降解,這種表達在一定的時間后就會消失。除非質粒被整合進入細胞的基因組,通過質粒上帶的篩選標記,通過篩選得到

    蛻皮激素調控誘導細胞基因表達實驗

    下面的方案是從蛻皮激素誘導的哺乳動物表達系統(Invitrogen 公司)附帶的方案修改而來。Stratagene 公司也出售相似的系統。本實驗來源于分子克隆實驗指南(第三版)下冊,作者:〔美〕J. 薩姆布魯克 D.W.拉塞爾。實驗材料帶有熒光素酶報道基因并受蛻皮激素誘導表達的質粒帶有感興趣的基因并

    穩定轉染的基本概念

    一般來說(由細胞類型決定),形成穩定轉染細胞的效率比瞬時轉染(transient transfection)的效率低1到2個數量級。利用可選擇的遺傳標記物有利于從非轉染細胞的中分離出稀少的穩定轉染物。

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