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實驗材料細胞試劑、試劑盒PBSTdT 反應混合液儀器、耗材Parafilm 膜實驗步驟1. 用無菌鑷子將一無菌蓋玻片放入 35 mm 培養皿中。2. 將大約 1X104 細胞接種于無菌蓋玻片上，培養 24~48 小時。凋亡誘導時，細胞鋪滿不超過 80%。如細胞貼壁不太好，可以用纖連蛋白、聚賴氨酸或血清預處理蓋玻片，以使細胞更好地貼壁生長。3. 誘導凋亡后，用 pH 7.2 的 PBS 輕輕洗細胞 1 次，不要除去垂死細胞，用冰冷的甲醇固定 10 分鐘。4. 室溫空氣干燥玻片 5 分鐘，在 pH 7.2 的 PBS 中溫育 10 分鐘重新水合。5. 按上述方法進行 TUNEL 反應。將合適的 Parafilm 膜放入溫室，膜上加 50 μl TdT 反應混合液，放蓋玻片，細胞朝下在反應液上。37℃ 孵育 1 小時。6. 從室溫中取出蓋玻片，放回 35 mm 培養皿中。用 PBS 洗細胞 3 次，用 FlooroGuard 固定液固......閱讀全文
實驗概要本實驗用TUNEL（TdT-mediated dUTP nick end labeling）細胞凋亡檢測試劑盒檢測了組織細胞在凋亡早期過程中細胞核DNA的斷裂情況。實驗原理其原理是熒光素（fluorescein）標記的dUTP在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT Enzyme）的作用下，可
（In situ cell death detection kit-POD法）一、 原理：TUNEL（TdT-mediated dUTP nick end labeling）細胞凋亡檢測試劑盒是用來檢測組織細胞在凋亡早期過程中細胞核DNA的斷裂情況。其原理是熒光素（fluorescein）標記的dU
考慮檢測方法 TUNEL分析一般采用顯色法或熒光檢測法。每一種都有其各自的優缺點，因此選擇哪一種取決于您的需求。熒光檢測感更為靈敏，但難以保留信號。由于成像時的光漂白，且隨著時間的流逝，熒光信號會逐漸喪失。熒光信號也會有更高的背景問題，這要取決于組織類型。顯色分析適用于組織切片，因為可以使
（一）一般光學顯微鏡術應用一般光學顯微鏡（簡稱光鏡）觀察組織切片是組織學研究的最基本方法。取動物或人體的新鮮組織塊，先用固定劑（fixative）固定（fixation），使組織中的蛋白質迅速凝固，防止細胞自溶和組織腐敗。常用的固定劑如灑精、甲醛、醋酸、苦味酸、四氧化鋨等，一般常將幾種固定劑配制成混
實驗方法原理光譜染色體核型分析（SKY)采用24種顏色對所有染色體進行涂染，在一次試驗中可以觀察到每一條染色體。該技術以光譜成像和傅里葉光譜學原理為基礎。對流式分選的染色體進行PCR標記，直接標記熒光素或間接標記半抗原。5種光譜學不同的純色染料進行組合得到獨特的染色體探針混合物。探針混合物與中期染色
基本方案 實驗方法原理 光譜染色體核型分析（SKY)采用24種顏色對所有染色體進行涂染，在一次試驗
二、細胞凋亡的細胞化學測定細胞凋亡的細胞化學測定包括細胞表面（細胞膜）的結構和通透性改變的測定和細胞核DNA改變的測定。根據應用的范圍，又可分為細胞群休和單個細胞測定兩種，以下僅介紹其中幾種較為常用的方法。碘化丙啶（propidium iodide,PI）檢測早期死亡細胞膜通透性狀態的不同是區分細胞
細胞凋亡與壞死是兩種完全不同的細胞凋亡形式，根據死亡細胞在形態學、生物化學和分子生物學上的差別，可以將二者區別開來。細胞凋亡的檢測方法有很多，下面介紹幾種常用的測定方法。一、細胞凋亡的形態學檢測 根據凋亡細胞固有的形態特征，人們已經設計了許多不同的細胞凋亡形態學檢測方法。 1 光學顯微鏡和倒
不同細胞不同狀態是有不同死法的，具體是細胞凋亡、壞死、還是程序性壞死，需要進一步排查分析來確定。而細胞凋亡是個復雜的過程，針對凋亡時期不同，檢測的方法有所不同。那如何去確定哪條途徑被觸發，在哪個步驟被阻斷，以及抑制劑是否能夠抑制呢？下面介紹幾種常用的測定方法。 一：細胞凋亡的形態學檢測 發生
一、細胞凋亡的形態學檢測1、光學顯微鏡和倒置顯微鏡（1） 未染色細胞：凋亡細胞的體積變小、變形，細胞膜完整但出現發泡現象，細胞凋亡晚期可見凋亡小體。貼壁細胞出現皺縮、變圓、脫落。（2） 染色細胞：常用姬姆薩染色、瑞氏染色等。凋亡細胞的染色質濃縮、邊緣化，核膜裂解、染色質分割成塊狀和凋亡小體等典型的凋
實驗步驟 一、桿狀病毒表達載體 最簡單的經典桿狀病毒表達載體是一個重組的桿狀病毒，其基因組含有一段外源核酸序列，通常為編碼目標蛋白質的dDNA，在多角體蛋白啟動子控制下進行轉錄。這個嵌合的基因由多角體蛋白啟動子和外源蛋白編碼序列組成
組織切片的 TUNEL 染色 TUNEL 染色的流式細胞計量術分析 貼壁細胞的 TUNEL 染色
組織切片的 TUNEL 染色 TUNEL 染色的流式細胞計量術分析 貼壁細胞的 TUNEL 染色
LIPOFECTAMINE 2000轉染試劑轉染步驟此實驗步驟設計用來進行24孔板貼壁細胞的瞬時或穩定轉染，其為設計用來在生長培養基中直接加入復合物。1. 轉染前一天，胰酶消化細胞并計數，細胞鋪板，使其在轉染日密度為90%。細胞鋪板在0.5ml含血清，不含抗生素的正常生長的培養基中。2. 對于每孔細
Cell Counting Kit-8（簡稱CCK8）試劑可用于簡便而準確的細胞增殖和毒性分析。相信做細胞的童鞋們對他都很熟悉，然鵝，你確定你使用CCK-8試劑的方式是完全正確的嗎？我們還是來仔細了解下吧： 一、CCK8檢測細胞增殖/毒性的原理 WST-8【化學名：2-(2-甲氧基-4-硝基
一、對照實驗 1．吸收實驗 應用尚無文獻報告的抗血清/自己制備的抗血清進行ICC染色時，需用相應的抗原吸收抗血清后，再孵育標本，判斷結果的可信性（結果應為陰性）。常用的吸收實驗分固相吸收和液相吸收兩種（見本書第一章 ），對于不能形成沉淀，難以用離心沉降法分離的一些小分子多肽類抗原，以固相吸收為佳
前言自然殺傷細胞(Nature Killer Cells, NK)是骨髓衍化的淋巴細胞，其最初通過巨大的顆粒性狀被識別。NK細胞能自發殺滅多種腫瘤細胞，同時還可保護正常的細胞，從而被認為是癌癥的克星。最重要的是，不管是在胞內還是胞外，NK細胞不需要免疫接種或提前激活，就能夠自發溶解特定的腫瘤靶細胞，
◆ TUNEL 與 ELISA 檢測凋亡的方法比較TUNEL法 細胞凋亡中, 染色體DNA雙鏈斷裂或單鏈斷裂而產生大量的粘性3'-OH末端，可在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT）的作用下，將脫氧核糖核苷酸和熒光素、過氧化物酶、堿性磷酸酶或生物素形成的衍生物標記到DNA的3
臨床微生物檢驗，在感染性疾病及相關病患的診斷治療預防及研究工作中起者越來越重要的作用，為了保障檢驗結果的準確性和可靠性， 日常工作中要注意開展質量控制，包括室間質量控制和室內質量控制。 室間質量控制是各地實驗室之間進行質量控制的一種方式，也是上一級實驗室對各實驗室進行質量管理的手段。參加由各省臨
圖3 單細胞耗氧率動態代謝檢測及分析 一步染色法檢測細胞對藥物的敏感性 應用ImageXpress?
◆ 細胞壞死與細胞凋亡細胞凋亡與壞死是兩種完全不同的細胞凋亡形式，根據死亡細胞在形態學、生物化學和分子生物學上的差別，可以將二者區別開來。細胞凋亡的檢測方法有很多，下面介紹幾種常用的測定方法。 一、細胞凋亡的形態學檢測 根據凋亡細胞固有的形態特征，人們已經設計了許多不同的細胞
對骨髓基質干細胞進行改造,使其在保持快速生長的同時向成骨細胞方向分化是目前國內外研究的熱點。實驗發現,成熟的成骨細胞可以通過細胞間的直接接觸作用促進骨髓基質干細胞增殖[ 1 ] ,此外成骨細胞可產生多種生長因子促進其骨髓基質干細胞的增殖、分化[ 2 ] 。由于骨髓基質干細胞通過誘導向成骨細胞分化后,
核型分析簡介染色體是細胞分裂期高度凝集的 DNA 蛋白質纖維，是間期染色質結構緊密盤繞折疊的結果。核型是指一個體細胞內的全部染色體按其大小、形態特征排列起來構成的圖像。將待檢細胞進行染色體數目、形態結構分析，確定其核型是否與正常核型一致，稱為核型分析。染色體核型分析，是遺傳學科學研究和輔助臨
實驗步驟 一、材料 1. 胞質分裂阻滯微核試驗 2. 微核的著絲點檢測 (1)從硬皮病 C R E S T 亞型的患者中取得的血清樣本。 (2) F I T C 標記的兔抗人 I g G 二抗。 (3) 過氧化物酶
實驗方法原理酶消化法制備2月齡未成熟長白豬睪丸組織的單細胞懸液，以 2 %～4 %牛血清白蛋白 (BSA)連續梯度作為分離介質，采用重力沉降法并結合細胞貼壁培養的方法分離精原細胞。實驗材料長白種系公豬試劑、試劑盒膠原酶胰蛋白酶脫氧核糖核酸酶牛血清白蛋白胎牛血清RPMI 1640培養基HE染液PBS儀
實驗方法原理 酶消化法制備2月齡未成熟長白豬睪丸組織的單細胞懸液，以 2 %～4 %牛血清白蛋白 (BSA)連續梯度作為分離介質，采用重力沉降法并結合細胞貼壁培養的方法分離精原細胞。
實驗方法原理酶消化法制備2月齡未成熟長白豬睪丸組織的單細胞懸液，以 2 %～4 %牛血清白蛋白 (BSA)連續梯度作為分離介質，采用重力沉降法并結合細胞貼壁培養的方法分離精原細胞。實驗材料長白種系公豬
血細胞分析儀的發展已有50年歷史了，國內醫院應用血細胞分析儀的情況也越來越普及。近年來由于綜合性高科技的飛速發展，血細胞分析儀上也不斷采用了最新的電子、光學、化學和計算機技術，從而不斷滿足臨床工作對血液細胞分析的要求。提供更加方便適用、更多功能和參數、更加準確、更快速度的血細胞分析儀，已經是各血細胞
【摘要】 目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7～8d小鼠的生殖細胞懸液；用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%；平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞；精原細胞主要分布
【摘要】 目的 探討小鼠精原細胞的分離純化。 方法 用組合酶消化法制備7～8d小鼠的生殖細胞懸液；用Percoll不連續密度梯度法分離精原細胞。 結果 所獲細胞懸液內活細胞、死細胞及細胞團的百分比分別為90.08%、9.92%及8.91%；平均每個睪丸可獲得4.136×105個細胞；精原細胞主要分布