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  • 做realtimePCR之前,你應該如何著手設計引物

    正在著手做 real-time PCR 的朋友們,我想最開始肯定要考慮引物設計的問題。看完下面的文字,我保證你得到想要的引物設計方法和引物序列。第一步:拿到你所要研究的基因的序列。不要告訴我你不會找序列。如果真的不會,請參考丁香園內其他版塊,如NCBI使用,序列查找等。第二步:確定你想用哪種方法。Taqman Probe 還是 SYBR 染料?兩種方法各有利弊,這里不贅述,不明白的依然參見其他版塊。但需要指出的是,后者在國內更常用,因為比較簡單,容易操作,容易分析。建議初學者選擇。第三步:動手設計引物1)兩種引物設計軟件。在設計 real-time PCR 引物時,常用的有非常 NB 的 primer premier 5.0 和 primer express 3.0 (升級版有5.0)。前者可以應用與常規PCR和real-time PCR;后者是ABI公司的real-time PCR儀器配套的引物設計軟件,專......閱讀全文

    做-realtime-PCR之前,你應該如何著手設計引物

    正在著手做 real-time?PCR?的朋友們,我想最開始肯定要考慮引物設計的問題。看完下面的文字,我保證你得到想要的引物設計方法和引物序列。第一步:拿到你所要研究的基因的序列。不要告訴我你不會找序列。如果真的不會,請參考丁香園內其他版塊,如NCBI使用,序列查找等。第二步:確定你想用哪種方法。T

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    RealTime-or-Kinetic-PCR

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    RealTime-PCR實驗流程

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    REALTIME-PCR-WITH-SYBR-GREEN-I-PROTOCOL

    1、反應體系 25ulCocktail 20 ul: Primer FP 1 ul + Primer RP 1u + 2 * SYBR GREEN I MIX 12.5 + H2O 5.5 ul cDNA 5 ul2、Primer 濃度,需要摸索,從200nM到700nm等,設置不同濃度。3、每個引

    realtime-PCR-常用儀器和探針

    ?1.SYBR Green I:一種DNA結合染料,能非特異性地與雙鏈DNA結合,結合后發出熒光,價格便宜,但因無特異性,易受到非特異性擴增和引物二聚體地的影響,是定量結果不可靠。可用融解曲線分析區分特異性和非特異性擴增,引物的設計和反應條件的優化對消除非特異性熒光有很大幫助。2.Taqman探針:

    實時定量PCR(Realtime-quantitative-PCR)

    mRNA表達的研究 微小殘留病變的檢測 腫瘤耐藥基因表達的研究 病毒感染的定量監測Vs普通PCR,RT-PCR的優勢 采用封閉的檢測模式,因此擴增產物導致污染的可能性比普通PCR要小得多 。 擴增產物的檢測在PCR擴增過程中同時進行,并且數據的采集、分析全部由 儀器 自動完成,因此整個檢測所 需的時

    realtime-PCR-常用儀器和探針

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    Realtime-PCR實驗注意事項

    實驗中的一些好習慣加入試劑之前,把它混勻一下,以免放置時間長了濃度不均移液槍用完之后要歸到最大計量的位置,防止久而久之彈簧失去彈性一定要記著關水浴箱,切記切記多和大家討論,同時多關注別人討論的經驗,這幾乎是最快提高的捷徑了所有的試劑都自己配,出了問題才好找原因防止RNA酶污染的措施1. 所有的玻璃器

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    RTPCR、QPCR、Realtime-PCR、realtime-RTPCR你真的區分的開嗎?

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    realtime/qPCR-常遇到的那些疑問

      通常來講,real-time PCR( qPCR)的反應程序不需要像常規的 PCR 那樣,要變性、退火、延伸 3 步。由于其產物長度在 80~150 bp 之間,所以只需要變性和退火就可以了。   SYBR@Green 等染料法,好在 PCR 擴增程序結束后,加一個溶解程序,來形成溶解曲

    realtime-PCR技術的原理及應用

    一、實時熒光定量PCR原理(一)定義:在PCR反應體系中加入熒光基團,利用熒光信號累積實時監測整個PCR進程,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法 。(二)實時原理1、常規PCR技術:對PCR擴增反應的終點產物進行定量和定性分析無法對起始模板準確定量,無法對擴增反應實時檢測。2、實時定量PC

    Realtime-PCR-數據導出-——-ABI儀器篇

      1. Real-time PCR數據:Real-time PCR完成后,所有數據并非可以直接導出,由于每一次實驗的情況都不相同,儀器的很多默認設定都會對最終數據結果造成重大偏差,所以在完成PCR過程后,需要人為對實驗結果進行條件設置,才能提取到科學有效的實驗結果,進而完成對實驗結果的分析和判斷。

    realtime-PCR中內參基因的CT值

    這個要看你在做PCR前的加樣量是否一致。如果加樣量是一致的,而內參做出來差別大(比如3-4個CT值)那說明你的實驗體系有嚴重的問題。理論上加入的DNA量一樣多,內參的CT值應該都一樣。如果你能肯定加樣量是一致的,那說明你的樣本要么降解了,要么就是你的實驗處理對內參的量產生了影響,必須換一個基因做內參

    realtime-PCR中內參基因的CT值

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    realtime-PCR負對照有信號問題分析

    引物設計不夠優化:應避免引物二聚體和發夾結構的出現。 引物濃度不佳:適當降低引物的濃度,并注意上下游引物的濃度配比。 鎂離子濃度過高:適當降低鎂離子濃度,或選擇更合適的 mix 試劑盒。 模板有基因組的污染:RNA?提取過程中避免基因組?DNA?的引入,或通過引物設計避免非特異擴增。

    Realtime-PCR實驗心得和RNA提取心得

    并不是所有的實驗都可以做real-time的,技術路線要選好當你的基因表達量少或有些不表達具體就是做普通pcr跑膠條帶比較弱,不是很亮的情況下個人覺得最好不要選擇real,不容易做好,特別是融解曲線用sbgr green染料做的話,引物設計時擴增片斷最好小于250bp,太長了不好擴預實驗先rt-pc

    realtime-PCR中內參基因的CT值

    這個要看你在做PCR前的加樣量是否一致。如果加樣量是一致的,而內參做出來差別大(比如3-4個CT值)那說明你的實驗體系有嚴重的問題。理論上加入的DNA量一樣多,內參的CT值應該都一樣。如果你能肯定加樣量是一致的,那說明你的樣本要么降解了,要么就是你的實驗處理對內參的量產生了影響,必須換一個基因做內參

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    Realtime-PCR與RTPCR的區別

    實時熒光定量PCR原理所謂實時熒光定量PCR技術,是指在PCR反應體系中加入熒光基團,利用熒光信號積累實時監測整個PCR進程,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。1.內標在傳統定量中的作用由于傳統定量方法都是終點檢測,即PCR到達平臺期后進行檢測,而PCR經過對數期擴增到達平臺期時,檢測重

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    這個要看你在做PCR前的加樣量是否一致。如果加樣量是一致的,而內參做出來差別大(比如3-4個CT值)那說明你的實驗體系有嚴重的問題。理論上加入的DNA量一樣多,內參的CT值應該都一樣。如果你能肯定加樣量是一致的,那說明你的樣本要么降解了,要么就是你的實驗處理對內參的量產生了影響,必須換一個基因做內參

    引物設計原則(Principle-of-realtime-quantiation-PCR-primer-)

    1、引物的長度一般為15-30bp,常用的是18-27bp,但不應大于38,因為過長會導致其延伸溫度大于74°C,不適于Taq?DNA聚合酶進行反應。2、引物序列在模板內應當沒有相似性較高,尤其是3’端相似性較高的序列,否則容易導致錯配。引物3’端出現3個以上的連續堿基,如GGG或CCC,也會使錯誤

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